全部流程來(lái)自:GEO數(shù)據(jù)庫(kù)挖掘—生信技能樹(shù)B站視頻,建議去看原文氓侧!
第一步:找到相關(guān)的GEO數(shù)據(jù)集(文獻(xiàn)/搜索)瓢喉,以胃癌gastric cancer為例
可去文獻(xiàn)中查找摹蘑,用于練習(xí)
第二步:運(yùn)行R包GEOquery獲取數(shù)據(jù)(非趁祓校看網(wǎng)速扰法,盡量下載下一點(diǎn)的包)
library(GEOquery)
eSet <- getGEO("GSE118916",
? ? ? ? ? ? ? destdir = '.',? ?#下載在當(dāng)前目錄
? ? ? ? ? ? ? getGPL = F)??#平臺(tái)信息不要
#查看下載得到的文件大小,與GEO網(wǎng)頁(yè)中標(biāo)識(shí)的是否一致
第三步:得到表達(dá)矩陣
#使用列表取子集的方法提取eSet列表里的第一個(gè)元素:eSet[[1]]毅厚;并使用exprs函數(shù)把它轉(zhuǎn)化成矩陣:exp <- exprs(eSet[[1]])
eSet[[1]]
exp <- exprs(eSet[[1]])
exp[1:4,1:4]#查看前四行
#代碼邏輯塞颁,把probe_id轉(zhuǎn)換為--->symbol ID/entrez ID
#分兩步走:過(guò)濾probe_id,得到每個(gè)基因所對(duì)應(yīng)的唯一的probe_id
得到probe_id與symbol ID這件的轉(zhuǎn)換關(guān)系
ID轉(zhuǎn)換的第一步必須要加載特定的R包吸耿,下載哪個(gè)包殴边,需要根據(jù)GPL來(lái)定
eSet[[1]]@annotation #查看GPL平臺(tái)信息,即芯片信息
#Google直接搜索相關(guān)R包珍语,安裝并調(diào)用
#如果有對(duì)應(yīng)的R包
library(R包)
#如果找不到R包
library(Biobase)
library(GEOquery)
gpl<-getGEO('GPL15297',destdir=".")
colnames(Table(gpl))
head(Table(gpl)[,c(1,15,19)])## you need to check this , which column do you need
probe2symbol=Table(gpl)[,c(1,15)]
write.csv(Table(gpl)[,c(1,15)],"GPL15207.csv")
tail(sort(table(ids$symbol)))#看高頻數(shù)的樣本
table(rownames(exp)%in%ids$probe_id)#查看exp與id是否一致
exp=exp[rownames(exp)%in%ids$probe_id,]#去除不一致的項(xiàng)
ids=ids[match(rownames(exp),ids$probe_id),]#使exp與id完全對(duì)應(yīng)
tmp=by(exp,ids$symbol,function(x)rownames(x)[which.max(rowMeans(x))])
probes=as.character(tmp)
dim(exp)
exp=exp[rownames(exp)%in%probes,]# 過(guò)濾有多個(gè)探針的基因
dim(exp)
rownames(exp)=ids[match(rownames(exp),ids$probe_id),2]
head(exp)
第四步:獲取分組信息
pd <-pData(eSet[[1]])
library(stringr)
group_list=ifelse(str_detect(pd$title,"Control")==TRUE,"contorl","treat")group_list
str_detect(pd$title,"Control")
方法二:自己根據(jù)CSV里文件類(lèi)型自己寫(xiě)代碼
group_list=c(rep("control",times=3),rep("treat",times=3))
第五步:檢查表達(dá)矩陣
方法一:管家基因
exp['GAPDH',]#檢驗(yàn)用的管家基因
exp['ACTB',]#同上
boxplot(exp)
#使用ggplot2畫(huà)各個(gè)樣本表達(dá)量的boxplot圖
# 準(zhǔn)備畫(huà)圖所需數(shù)據(jù)exp_L
library(reshape2)
head(exp)
exp_L=melt(exp)
head(exp_L)
colnames(exp_L)=c('symbol','sample','value')
head(exp_L)
# 獲得分組信息
library(stringr)
group_list=ifelse(str_detect(pd$title,"Control")==TRUE,"contorl","treat")
group_list
exp_L$group=rep(group_list,each=nrow(exp))
head(exp_L)
# ggplot2畫(huà)圖 library(ggplot2)
p=ggplot(exp_L,aes(x=sample,y=value,fill=group))+geom_boxplot()
print(p)
##boxplot圖精修版p=ggplot(exp_L,aes(x=sample,y=value,fill=group))+geom_boxplot()
p=p+stat_summary(fun.y="mean",geom="point",shape=23,size=3,fill="red")
p=p+theme_set(theme_set(theme_bw(base_size=20)))
p=p+theme(text=element_text(face='bold'),axis.text.x=element_text(angle=30,hjust=1),axis.title=element_blank())
print(p)
#查案畫(huà)出的箱型圖,如果均值不在一條線(xiàn)上竖幔,說(shuō)明樣本有批次效應(yīng)板乙,需要人工校正
library(limma)
exp=normalizeBetweenArrays(exp)
#除了箱型圖還可以畫(huà)其他的圖
p=ggplot(exp_L,aes(x=sample,y=value,fill=group))+geom_violin()
print(p)
p=ggplot(exp_L,aes(value,fill=group))+geom_histogram(bins=200)+facet_wrap(~sample,nrow=4)
print(p)
p=ggplot(exp_L,aes(value,col=group))+geom_density()+facet_wrap(~sample,nrow=4)
print(p)
p=ggplot(exp_L,aes(value,col=group))+geom_density()
print(p)
第四步:檢查樣本信息,檢查樣本分組信息,一般看PCA圖募逞,hclust圖
# 更改表達(dá)矩陣列名
head(exp)
colnames(exp)=paste(group_list,1:6,sep='')
head(exp)
# 定義nodePar
nodePar<-list(lab.cex=0.6,pch=c(NA,19),cex=0.7,col="blue")
# 聚類(lèi)
hc=hclust(dist(t(exp)))
par(mar=c(5,5,5,10))
# 繪圖
plot(as.dendrogram(hc),nodePar=nodePar,horiz=TRUE)
#繪PCA圖
library(ggfortify)
# 互換行和列蛋铆,再dim一下df=as.data.frame(t(exp))
# 不要view df,列太多放接,軟件會(huì)卡状汤病;
dim(df)
dim(exp)
exp[1:6,1:6]
df[1:6,1:6]
df$group=group_list
autoplot(prcomp(df[,1:ncol(df)-1)]),data=df,colour='group')
#保存數(shù)據(jù)
save(exp,group_list,file="step2output.Rdata")
第五步:差異分析
#limma包需要以下三個(gè)數(shù)據(jù)纠脾,表達(dá)矩陣(exp)玛瘸;分組矩陣(design);差異比較矩陣(contrast.matrix)
#表達(dá)矩陣(exp)我們?cè)缇偷玫搅斯兜福挥迷僦谱髁撕ǎ晃覀円驳玫搅舜娣欧纸M信息的向量group_list,用它來(lái)制作我們的分組矩陣
rm(list=ls())## 魔幻操作慧脱,一鍵清空
options(stringsAsFactors=F)
load(file="step2output.Rdata")#上步得到的EXP分組信息
dim(exp)
library(limma)# 做分組矩陣?
design<-model.matrix(~0+factor(group_list))
colnames(design)=levels(factor(group_list))
rownames(design)=colnames(exp)
design#查看得到的分組矩陣
#輸入數(shù)據(jù)—差異比較矩陣
contrast.matrix<-makeContrasts(paste0(c("treat","contorl"),collapse="-"),levels=design)
contrast.matrix
#limma包做差異分析渺绒,只有三個(gè)步驟:lmFit,eBayes菱鸥,topTable
##step1
fit<-lmFit(exp,design)
##step2
fit2<-contrasts.fit(fit,contrast.matrix)##這一步很重要宗兼,大家可以自行看看效果fit2<-eBayes(fit2) ##default no trend!!!
##eBayes()withtrend=TRUE
##step3
tempOutput=topTable(fit2,coef=1,n=Inf)nrDEG=na.omit(tempOutput)
#可以保存數(shù)據(jù) write.csv(nrDEG2,"limma_notrend.results.csv",quote = F)
head(nrDEG)
save(nrDEG,file="DEGoutput.Rdata") #保存差異數(shù)據(jù)nrDEG
#檢查差異數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性,進(jìn)行可視化
#熱圖
rm(list=ls())## 魔幻操作氮采,一鍵清空
options(stringsAsFactors=F)
load(file="DEGoutput.Rdata")
load(file="DEGinput.Rdata")
library(pheatmap)
choose_gene=head(rownames(nrDEG),25)
choose_matrix=exp[choose_gene,]
choose_matrix=t(scale(t(choose_matrix)))
pheatmap(choose_matrix)
#火山圖
rm(list=ls()) ## 魔幻操作殷绍,一鍵清空
options(stringsAsFactors=F)
load(file="DEGoutput.Rdata")
colnames(nrDEG)
plot(nrDEG$logFC,-log10(nrDEG$P.Value))
DEG=nrDEG
logFC_cutoff<-with(DEG,mean(abs(logFC))+2*sd(abs(logFC)))DEG$change=as.factor(ifelse(DEG$P.Value<0.05&abs(DEG$logFC)>logFC_cutoff,ifelse(DEG$logFC>logFC_cutoff,'UP','DOWN'),'NOT'))
head(DEG)
g=ggplot(data=DEG,aes(x=logFC,y=-log10(P.Value),color=change))+geom_point(alpha=0.4,size=1.75)+theme_set(theme_set(theme_bw(base_size=20)))+xlab("log2 fold change")+ylab("-log10 p-value")+ggtitle(this_tile)+theme(plot.title=element_text(size=15,hjust=0.5))+scale_colour_manual(values=c('blue','black','red'))
print(g)
第六步:富集分析
#KEGG富集分析
library(clusterProfiler)
gene_up=deg[deg$change=='up','ENTREZID']
gene_down=deg[deg$change=='down','ENTREZID']
gene_diff=c(gene_up,gene_down)
gene_all=deg[,'ENTREZID']
kk.up<-enrichKEGG(gene=gene_up,organism='hsa',universe=gene_all,pvalueCutoff=0.9,qvalueCutoff=0.9)
head(kk.up)[,1:6]
dim(kk.up)
kk.down<-enrichKEGG(gene=gene_down,organism='hsa',universe=gene_all,pvalueCutoff=0.9,qvalueCutoff=0.9)
head(kk.down)[,1:6]
dim(kk.down)
kk.diff<-enrichKEGG(gene=gene_diff,organism='hsa',pvalueCutoff=0.05)
head(kk.diff)[,1:6]
kegg_diff_dt<-kk.diff@result
down_kegg<-kk.down@result%>%
? ? filter(pvalue<0.05) %>%mutate(group=-1)
up_kegg<-kk.up@result%>%
? ? filter(pvalue<0.05) %>%mutate(group=1)
kegg_plot<-function(up_kegg,down_kegg)
{
dat=rbind(up_kegg,down_kegg)colnames(dat)
dat$pvalue=-log10(dat$pvalue)
dat$pvalue=dat$pvalue*dat$group
dat=dat[order(dat$pvalue,decreasing=F),]
g_kegg<-ggplot(dat,aes(x=reorder(Description,order(pvalue,decreasing=F)),y=pvalue,fill=group))+geom_bar(stat="identity")+scale_fill_gradient(low="blue",high="red",guide=FALSE)+scale_x_discrete(name="Pathway names")+scale_y_continuous(name="log10P-value")+coord_flip()+theme_bw()+theme(plot.title=element_text(hjust=0.5))+ggtitle("Pathway Enrichment")
}
g_kegg<-kegg_plot(up_kegg,down_kegg)
g_kegg
ggsave(g_kegg,filename='kegg_up_down.png')#繪圖并保存
#GSEA是另一個(gè)常用的富集分析方法,目的是看看基因全局表達(dá)量的變化是否有某些特定的基因集合的傾向性扳抽。
data(geneList,package="DOSE")
head(geneList)
length(geneList)
names(geneList)
boxplot(geneList)
boxplot(deg$logFC)
geneList=deg$logFC
names(geneList)=deg$ENTREZID
geneList=sort(geneList,decreasing=T)
kk_gse<-gseKEGG(geneList=geneList,organism='hsa',nPerm=1000,minGSSize=120,pvalueCutoff=0.9,verbose=FALSE)
head(kk_gse)[,1:6]
gseaplot(kk_gse,geneSetID=rownames(kk_gse[1,]))
down_kegg<-kk_gse[kk_gse$pvalue<0.05&kk_gse$enrichmentScore<0,];down_kegg$group=-1
up_kegg<-kk_gse[kk_gse$pvalue<0.05&kk_gse$enrichmentScore>0,];up_kegg$group=1
gse_kegg=kegg_plot(up_kegg,down_kegg)
print(gse_kegg)
ggsave(gse_kegg,filename='kegg_up_down_gsea.png')
#GO富集分析
GO富集分析原理:有一個(gè)term注釋了100個(gè)差異表達(dá)基因參與了哪個(gè)過(guò)程篡帕,注釋完之后(模式生物都有現(xiàn)成的注釋包,不用我們自己注釋?zhuān)┟衬兀?jì)算相對(duì)于背景它是否顯著集中在某條通路镰烧、某一個(gè)細(xì)胞學(xué)定位、某一種生物學(xué)功能楞陷。
對(duì)GO database analysis一般從三個(gè)層面進(jìn)行:
Cellular component怔鳖,CC? 細(xì)胞成分
Biological process, BP? 生物學(xué)過(guò)程
Molecular function固蛾,MF? 分子功能
這三個(gè)層面具體是指:
Cellular component解釋的是基因存在在哪里结执,在細(xì)胞質(zhì)還是在細(xì)胞核?如果存在細(xì)胞質(zhì)那在哪個(gè)細(xì)胞器上艾凯?如果是在線(xiàn)粒體中那是存在線(xiàn)粒體膜上還是在線(xiàn)粒體的基質(zhì)當(dāng)中献幔?這些信息都叫Cellular component。
Biological process是在說(shuō)明該基因參與了哪些生物學(xué)過(guò)程趾诗,比如蜡感,它參與了rRNA的加工或參與了DNA的復(fù)制蹬蚁,這些信息都叫Biological process
Molecular function在講該基因在分子層面的功能是什么?它是催化什么反應(yīng)的郑兴?
library(clusterProfiler)
gene_up=deg[deg$change=='up','ENTREZID']
gene_down=deg[deg$change=='down','ENTREZID']
gene_diff=c(gene_up,gene_down)
head(deg)
#細(xì)胞組分
ego_CC<-enrichGO(gene=gene_diff,OrgDb=org.Hs.eg.db,ont="CC",pAdjustMethod="BH",minGSSize=1,pvalueCutoff=0.01,qvalueCutoff=0.01,readable=TRUE)
#生物過(guò)程犀斋,重要
ego_BP<-enrichGO(gene=gene_diff,OrgDb=org.Hs.eg.db,ont="BP",pAdjustMethod="BH",minGSSize=1,pvalueCutoff=0.01,qvalueCutoff=0.01,readable=TRUE)
#分子功能,很重要
ego_MF<-enrichGO(gene=gene_diff,OrgDb=org.Hs.eg.db,ont="MF",pAdjustMethod="BH",minGSSize=1,pvalueCutoff=0.01,qvalueCutoff=0.01,readable=TRUE)
save(ego_CC,ego_BP,ego_MF,file="ego_GPL6244.Rdata")
rm(list=ls())
load(file="ego_GPL6244.Rdata")
#第一種情连,條帶圖叽粹,按p從小到大排的#如果運(yùn)行了沒(méi)出圖,就dev.new()
barplot(ego_CC,showCategory=20,title="EnrichmentGO_CC")
barplot(ego_BP,showCategory=20,title="EnrichmentGO_CC")
#第二種却舀,點(diǎn)圖虫几,按富集數(shù)從大到小的dotplot(ego_CC,title="EnrichmentGO_BP_dot")
#保存
pdf(file="dotplot_GPL6244.pdf")
dotplot(ego_CC,title="EnrichmentGO_BP_dot")
dev.off()