單細胞數(shù)據(jù)中到底應該如何處理線粒體基因

什么是線粒體基因

線粒體是參與細胞凋亡啟動和執(zhí)行的主要細胞器之一癌蚁。線粒體基因在大多數(shù)細胞中表達赶站,其表達水平是細胞類型特異性的绰上。也就是說這個也是和細胞類型及其狀態(tài)有關系的泡垃。

為什么要處理

因為線粒體基因的高表達水平可能是:

  • 樣品質(zhì)量差析珊,導致大量細胞凋亡或裂解。
  • 特定樣本的生物學蔑穴,例如腫瘤活檢唾琼,可能由于代謝活動和/或壞死而增加線粒體基因表達。

凋亡細胞表達線粒體基因澎剥,并將這些轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物輸出到哺乳動物細胞的細胞質(zhì)中锡溯。例如,當?shù)蛲龅募毎环湃胝5募毎麘乙褐醒埔Γ瑫z測到更多的線粒體基因祭饭。檢測到的線粒體膜占總膜的百分比如圖所示


Removal of DeadCells fromSingle Cell SuspensionsImproves Performance for10x Genomics? Single Cell Applications

線粒體是參與細胞凋亡啟動和執(zhí)行的主要細胞器之一。細胞凋亡的過程依賴于一系列信號事件叙量,包括線粒體基因表達的增加和半胱天冬酶的激活倡蝙。因此,我們在計算每個樣本中源自線粒體基因表達的UMIs數(shù)量時绞佩,評估了獨特轉(zhuǎn)錄本的比例寺鸥。在> 80%活細胞的高質(zhì)量樣品中,我們只檢測到低比例的線粒體細胞(約3%)品山。與預期的一樣胆建,在只包含20%活細胞(74%)的Digitonin高樣本中,線粒體轉(zhuǎn)錄本的數(shù)量最高肘交。相比之下笆载,含有50%活細胞的樣本只顯示線粒體基因表達略有增加(5-7%),這表明存活率確實與觀察到的線粒體轉(zhuǎn)錄本數(shù)量相關涯呻。

被裂解的細胞或細胞膜被破壞的細胞釋放它們的細胞質(zhì)轉(zhuǎn)錄本凉驻,而線粒體轉(zhuǎn)錄本可能仍然保留在雙膜結合的線粒體內(nèi)。具有完整線粒體的裂解細胞可能被gems包裹复罐,這也增加了檢測到的線粒體轉(zhuǎn)錄片段的概率涝登。

如何處理

一般我們建議卡到30%以內(nèi),當然還是要看這群細胞為什么會高效诅。建議是不卡閾值直接做降維分群胀滚,然后按分群來看小提琴圖咳短,如果只有一個或幾個細胞群有差異的線粒體轉(zhuǎn)錄上調(diào)和低總UMI計數(shù),這個群最有可能代表一個死亡或頻臨死亡的細胞群蛛淋。此時咙好,再去不遲。

另外一點褐荷,我們注意到勾效,cellranger3比cellRanger 2檢測的MT(人的是MT開頭的基因,其他物種主要找到相應的基因)高的細胞更多叛甫。這主要是因為:cellRanger3或更高版本具有比版本2中的cell calling算法更敏感层宫,新算法基于EmptyDrops方法(Lun et al., 2018)其监。這種方法可以檢測到之前版本算法所遺漏的細胞萌腿,特別是死亡或垂死的細胞,RNA含量自然較低的細胞抖苦,或異質(zhì)性樣本中的細胞毁菱。

這就也是為什么我們會主動地看看細胞中MT基因表達的原因,選擇從下游分析中排除這些細胞锌历。而在cellranger count管道中贮庞,沒有直接的方法可以排除線粒體豐富的細胞。但是究西,您可以使用下面兩種方法中的任何一種來間接完成此任務窗慎。

  • Using Cell Ranger and Loupe Cell Browser

質(zhì)量差的細胞通常有低總UMI計數(shù),很少有上調(diào)基因(表明低總基因表達)卤材,而只有MT基因過表達遮斥。例如,在下面的圖中扇丛,您可以看到基于圖形的聚類t-SNE圖中聚類1(頂部的青色聚類)的基因表术吗。與上述鑒定死亡細胞的標準一致,在這個群集中只有線粒體基因上調(diào)晕拆。對cluster 9中的細胞也進行了類似的觀察藐翎。


下面的圖顯示,與其他細胞相比实幕,Cluster1和Cluster19中的細胞的總UMI計數(shù)也很低。

您可以從一個cellranger count 輸出文件中獲得Cluster1和9中細胞的條形碼堤器。默認的分群結果(基于圖)在Cell Ranger輸出的“ANALYSIS”路徑中昆庇。例如,在下面的圖中闸溃,cluster 1和cluster 9的細胞高表達了MT整吆。這些cluster的條形碼可以在輸出文件中找到:outs/analysis/clustering/graphclust/cluster.csv

您也可以使用Loupe細胞瀏覽器下載的非MT豐富細胞拱撵。為此,首先去除富集MT的cluster1和9表蝙。然后使用“導出”功能在Loupe Cell瀏覽器如下拴测。

步驟2。使用cellranger reanalyze重新運行二級分析并生成一個新的cloupe文件府蛇,不使用MT高表達的barcode集索。要指定條形碼,需要使用——barcodes選項汇跨。

  • Seurat

第二種方法就是我們經(jīng)典的Seurat务荆。第三方工具如Seurat可用于篩選線粒體基因表達率高的細胞。請在這里找到更多的信息穷遂。(章節(jié)“QC和選擇細胞進行進一步分析”)



單細胞轉(zhuǎn)錄組||Seurat新版教程:Guided Clustering Tutorial
https://kb.10xgenomics.com/hc/en-us/articles/360001086611-Why-do-I-see-a-high-level-of-mitochondrial-gene-expression-
https://kb.10xgenomics.com/hc/en-us/articles/360026505392-Why-do-I-see-more-MT-enriched-cells-from-Cell-Ranger-3-compared-to-Cell-Ranger-2-
https://kb.10xgenomics.com/hc/en-us/articles/360026508452-How-can-I-exclude-poor-quality-cells-such-as-cells-that-show-enrichment-of-MT-genes

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