Week26 — 人類(lèi)原發(fā)性腫瘤的染色質(zhì)可及性圖譜-03

Week24 — 人類(lèi)原發(fā)性腫瘤的染色質(zhì)可及性圖譜-01: 主要回顧了ATAC-seq方法的原理和優(yōu)點(diǎn)留搔,并與其他研究染色質(zhì)可及性方法的比較取试,然后介紹了這篇文章的主要結(jié)果和亮點(diǎn)以及提供的數(shù)據(jù)資源懊蒸。
Week25 — 人類(lèi)原發(fā)性腫瘤的染色質(zhì)可及性圖譜-02:介紹了文章思路和主要結(jié)果墓拜。
這篇文章主要了解下補(bǔ)充材料的分析方法潮售。


1. ATAC-seq數(shù)據(jù)預(yù)處理和比對(duì)

ATAC-seq預(yù)處理和比對(duì)使用的是PEPATAC pipeline(http://code.databio.org/PEPATAC/)。
PEPATAC pipeline是一個(gè)打包的ATAC-seq數(shù)據(jù)預(yù)處理流程动壤,包括對(duì)原始數(shù)據(jù)的去接頭、比對(duì)淮逻、call peak琼懊、創(chuàng)建bigwig、TSS富集文件等其他一些統(tǒng)計(jì)結(jié)果文件爬早。
輸出的圖如:


具體包括:

  • Bowtie2 比對(duì)哼丈,移除比對(duì)到chrM和重復(fù)序列
-k 1 -D 20 -R 3 -N 1 -L 20 -i S,1,0.50 -X 2000 –rg-id # remove repeats的參數(shù)
--very-sensitive -X 2000 --rg-id # bowtie2參數(shù)
  • 排序去除重復(fù)
    使用Picard 的MarkDuplicates去除重復(fù)。
-f 2 -q 10 -b -@ 20 # 排序參數(shù)
VALIDATION_STRINGENCY =LENIENT REMOVE_DUPLICATES = true #去重參數(shù)

2. call peaks(MACS2)

這里他們選用固定寬度(fixed-width)的peaks,優(yōu)點(diǎn)有:1)對(duì)大量的peaks進(jìn)行counts和motif分析時(shí)可以減小誤差筛严;2)對(duì)于大量數(shù)據(jù)集的可以合并峰得到一致性的peaks;
使用的是macs2 call peaks,參數(shù)如下:

--shift -75 --extsize 150 --nomodel --call-summits --nolambda --keep-dup all -p 0.01

同時(shí)根據(jù)hg38 blacklist過(guò)濾醉旦,并除去染色體兩端以外的峰。
一個(gè)樣本的overlaps他們是通過(guò)迭代移除的方法桨啃,首先保留最顯著的peak,然后任何與最顯著peak有直接overlap的peaks都被移除车胡;接著對(duì)另一個(gè)最顯著性的peak進(jìn)行相同的操作,最終保留所有更顯著的peaks照瘾,移除與其有直接overlaps的peaks匈棘。

3. ATAC-seq數(shù)據(jù)分析—— 構(gòu)建counts矩陣并標(biāo)準(zhǔn)化

為了獲得每個(gè)峰中獨(dú)立的Tn5插入的數(shù)量,首先用RRsamtools “scanbam”對(duì)BAM文件矯正Tn5偏移量(“+” stranded +4 bp, “-” stranded -5 bp)并存入Genomic Ranges對(duì)象析命。然后用“countOverlaps”對(duì)矯正后的插入位點(diǎn)計(jì)數(shù)主卫,最終得到 562,709 x 796 counts 矩陣逃默。
counts矩陣用edgeR “cpm(matrix , log = TRUE,prior.count = 5)”標(biāo)準(zhǔn)化,然后用R中的preprocessCore’s “normalize.quantiles”做分位數(shù)標(biāo)準(zhǔn)化簇搅。

4. ATAC-seq data analysis – Transcription factor footprinting

TF足跡的分析:
一是參考了文章doi: 10.1016/j.celrep.2017.05.003:

  • 首先確定peaks內(nèi)的TF motif的位置完域,用pan-cancer peak set 結(jié)合CIS-BP motifs計(jì)算motif的位置,motifmatchr “matchMotifs(positions = “out”)
  • 然后計(jì)算flanking accessibilityfootprint depth
  • 最后確定哪個(gè)TF的足跡與基因的表達(dá)是顯著相關(guān)
    通過(guò)將flanking accessibility or footprint depth與250個(gè)隨機(jī)的TFs的關(guān)聯(lián)分析生成零均值和標(biāo)準(zhǔn)偏差瘩将。

5. ATAC-seq data analysis – chromVAR for transcription factor activity

除了足跡分析吟税,他們還用chromVAR包評(píng)估TF的活動(dòng),首先用chromVAR deviations函數(shù)計(jì)算GC矯正偏差鸟蟹,然后將矯正偏差與motif相關(guān)的TFs關(guān)聯(lián)乌妙,最后5000個(gè)轉(zhuǎn)錄因子基序和非相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子基因的RNA-seq基因表達(dá)之間的隨機(jī)相關(guān)性,以計(jì)算每個(gè)相關(guān)性的FDR建钥。具體參考:Week4— chromVAR:預(yù)測(cè)染色質(zhì)可及性相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子

6. ATAC-seq data analysis – chromVAR for GWAS enrichment

  • 首先從GWAS catalog(https://www.ebi.ac.uk/gwas/docs/file-downloads)下載SNPs位點(diǎn)藤韵,過(guò)濾和16種癌癥類(lèi)型相關(guān)的SNPs位點(diǎn)。
  • 加上連鎖不平衡(Linkage Disequilibrium 熊经,LD) 信息( r 2 > 0.8)
    LD信息從haploreg 網(wǎng)站下載 http://archive.broadinstitute.org/mammals/haploreg/data/
  • 移走位于exons或UTR區(qū)域的SNPs位點(diǎn)泽艘,得到最后的SNP列表
  • 將最后的SNP列表與遠(yuǎn)端 binarization peak 集overlap,得到一個(gè)二元匹配矩陣镐依。每列代表不同癌癥癌癥類(lèi)型的GWAS SNP匹涮,每行代表一個(gè)peak,這個(gè)peak來(lái)自遠(yuǎn)端 binarization peak 集槐壳。
  • 用chromVAR deviations函數(shù)計(jì)算GC矯正偏差
  • PNAMER將“偏差分?jǐn)?shù)”轉(zhuǎn)換為p值然低,并使用Bejimi-HocHBG程序調(diào)整
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