bulk RNA-Seq (5)差異分析

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差異表達(dá)分析用于比較兩個(gè)樣本中同一個(gè)基因的的表達(dá)量是否存在差異击吱。用到的統(tǒng)計(jì)方法是假設(shè)檢驗(yàn)篮条,所以樣本需要重復(fù)。常用的軟件包括DESeq2缴渊、edgeR,這里推薦使用trinity軟件包的一個(gè)程序run_DE_analysis.pl鱼炒,安裝方法:conda install trinity

run_DE_analysis.pl

#!/usr/bin/env perl

use strict;
use warnings;
use Carp;
use Getopt::Long qw(:config no_ignore_case bundling pass_through);
use Cwd;
use FindBin;
use File::Basename;
use lib ("$FindBin::RealBin/../../PerlLib");
use Fasta_reader;
use Data::Dumper;


my $ROTS_B = 500;
my $ROTS_K = 5000;


my $usage = <<__EOUSAGE__;


#################################################################################################
#
#  Required:
#
#  --matrix|m <string>               matrix of raw read counts (not normalized!)
#
#  --method <string>               edgeR|DESeq2|voom|ROTS
#                                     note: you should have biological replicates.
#                                           edgeR will support having no bio replicates with
#                                           a fixed dispersion setting.
#
#  Optional:
#
#  --samples_file|s <string>         tab-delimited text file indicating biological replicate relationships.
#                                   ex.
#                                        cond_A    cond_A_rep1
#                                        cond_A    cond_A_rep2
#                                        cond_B    cond_B_rep1
#                                        cond_B    cond_B_rep2
#
#
#  General options:
#
#  --min_rowSum_counts <int>       default: 2  (only those rows of matrix meeting requirement will be tested)
#
#  --output|o                      name of directory to place outputs (default: \$method.\$pid.dir)
#
#  --reference_sample <string>     name of a sample to which all other samples should be compared.
#                                   (default is doing all pairwise-comparisons among samples)
#
#  --contrasts <string>            file (tab-delimited) containing the pairs of sample comparisons to perform.
#                                  ex.
#                                       cond_A    cond_B
#                                       cond_Y    cond_Z
#
#
###############################################################################################
#
#  ## EdgeR-related parameters
#  ## (no biological replicates)
#
#  --dispersion <float>            edgeR dispersion value (Read edgeR manual to guide your value choice)
#                                    http://www.bioconductor.org/packages/release/bioc/html/edgeR.html
#  ## ROTS parameters
#  --ROTS_B <int>                   : number of bootstraps and permutation resampling (default: $ROTS_B)
#  --ROTS_K <int>                   : largest top genes size (default: $ROTS_K)
#
#
###############################################################################################
#
#   Documentation and manuals for various DE methods.  Please read for more advanced and more
#   fine-tuned DE analysis than provided by this helper script.
#
#  edgeR:       http://www.bioconductor.org/packages/release/bioc/html/edgeR.html
#  DESeq2:      http://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/DESeq2.html
#  voom/limma:  http://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/limma.html
#  ROTS:        http://www.btk.fi/research/research-groups/elo/software/rots/
#
###############################################################################################

腳本用法

perl anaconda3/opt/trinity-2.1.1/Analysis/DifferentialExpression/run_DE_analysis.pl \ #你的路徑
--matrix genes.counts.matrix \ #原始count矩陣
--method DESeq2 \ #差異分析的軟件
--samples_file sample.txt \ #分組的樣本信息表

輸入:read count矩陣
輸出:差異分析結(jié)果


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