群體遺傳學(xué)專題二之GATK實(shí)戰(zhàn)

寫(xiě)在最前面

本次的GATK實(shí)戰(zhàn)用到的raw data是水稻的宾尚,reference是v4版本泣崩,具體如下:
raw data:EV19-0_HQ_clean_R1.fq/EV19-0_HQ_clean_R2.fq
reference:IRGSP_v4.fasta
我在運(yùn)行GATK的時(shí)候并沒(méi)有每一步都用GATK的工具膀息,還涉及到另外幾個(gè)軟件,名稱和版本如下:
bwa-0.7.17
samtools-1.8
picard-tools-1.119
GenomeAnalysis TK-3.4.-0
將這些軟件安裝好并且加入到環(huán)境變量之后就可以進(jìn)入實(shí)戰(zhàn)部分啦。


以下是我的GATK實(shí)戰(zhàn)內(nèi)容:

1. 建立ref的index

bwa index IRGSP_v4.fasta

bwaindex命令 建立reference序列的index芯肤,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生5個(gè)文件,分別為IRGSP_v4.fasta為前綴的sa压鉴、pac崖咨、bwt、ann油吭、amb格式的文件

2. 建立ref的索引內(nèi)容

samtools faidx IRGSP_v4.fasta

samtoolsfaidx命令 建立reference序列的索引內(nèi)容击蹲,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)以IRGSP_v4.fasta為前綴的fai文件

3. 建立ref的dict內(nèi)容

java -Xmx45g -jar CreateSequenceDictionary.jar R=IRGSP_v4.fasta O=IRGSP_v4.dict

picard工具包 中的CreateSequenceDictionary建立reference序列的dict,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)以IRGSP_v4.fasta為前綴的dict文件

注:前三步結(jié)束一共會(huì)產(chǎn)生以ref名為前綴的7個(gè)文件婉宰,在此基礎(chǔ)上才能進(jìn)行后續(xù)命令程序歌豺,若在之前已經(jīng)進(jìn)行過(guò)以此ref為基礎(chǔ)的相關(guān)內(nèi)容,則可以跳過(guò)前三步


4. 對(duì)raw data文件進(jìn)行過(guò)濾心包,加header并生成sam文件

bwa mem -M -t 20 -R "@RG\tID:EV\tPL:ILLUMINA\tLB:EV\tSM:EV"  IRGSP_v4.fasta EV19-0_HQ_clean_R1.fq EV19-0_HQ_clean_R2.fq -o EV.sam

bwamem命令 對(duì)fq文件進(jìn)行比對(duì)過(guò)濾类咧,并加header生成sam文件

參數(shù)解釋:
-M:用來(lái)處理同一個(gè) reads比對(duì)到參考基因組上不同位置的情況
-t:線程數(shù)
-R:設(shè)置 reads的 header
-o:輸出文件

注1:關(guān)于加header的內(nèi)容,一般格式為“@RG ID:樣品ID號(hào) PL:測(cè)序平臺(tái)(一般為ILLUMINA) LB:樣品的文庫(kù)名(一般為樣品名) SM:樣品名稱”其中所有的空格都是\t(制表符)
注2:對(duì)于pair-end文件,命令如上所示轮听,在ref后輸入 read1.fq read2.fq 骗露;對(duì)于sngle-end文件,則只需要在ref后輸入read.fq

5. 將sam文件轉(zhuǎn)為bam文件

samtools view -bS EV.sam -o EV.bam

samtoolsview命令 將sam文件轉(zhuǎn)為bam文件血巍,(bam文件是二進(jìn)制萧锉,運(yùn)算速度會(huì)快),此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)bam文件

參數(shù)解釋:
-b:輸出bam文件(因?yàn)槟J(rèn)輸出是sam)
-S:輸入sam文件(因?yàn)槟J(rèn)輸入是bam)

6. 對(duì)bam文件進(jìn)行排序

java -Xmx45g -jar SortSam.jar INPUT=EV.bam OUTPUT=EV_sort.bam SORT_ORDER=coordinate

picard工具包 中的SortSam對(duì)上一步得到的bam文件中同一染色體對(duì)應(yīng)的條目按照坐標(biāo)順序從小到大進(jìn)行排序述寡,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)排序過(guò)的bam文件柿隙,可命名為EV_sort.bam

7. 對(duì)排序后的bam文件進(jìn)行去重

java -Xmx100g -jar MarkDuplicates.jar INPUT=EV_sort.bam OUTPUT=EV_dedup.bam METRICS_FILE=EV_dedup.metrics ASSUME_SORTED=true VALIDATION_STRINGENCY=SILENT CREATE_INDEX=true

picard工具包 中的MarkDuplicates對(duì)排序后的bam文件進(jìn)行去重(由于PCR擴(kuò)增底物的過(guò)程中使樣品出現(xiàn)重復(fù),故要去重鲫凶,此步使重復(fù)的reads帶上標(biāo)簽禀崖,便于后續(xù)處理),此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)metrics文件螟炫,一個(gè)bai文件波附,一個(gè)去重的bam文件,可命名為EV_dedup.bam
參數(shù)解釋:
ASSUME_SORTED:默認(rèn)為false昼钻,經(jīng)過(guò)sortsam后改為true
CREATE_INDEX:創(chuàng)建索引(true才會(huì)產(chǎn)生bai文件)

注1:metrics文件用于寫(xiě)入一些duplicates的統(tǒng)計(jì)信息
注2:CREATE_INDEX使得bai文件產(chǎn)生掸屡,若不在這一步創(chuàng)建,則下一步要先用samtools的index命令對(duì)EV_dedup.bam建立索引才行然评。

8. 建立indel區(qū)間文件

java -Xmx45g -jar GenomeAnalysisTK.jar -T RealignerTargetCreator -R IRGSP_v4.fasta -I EV_dedup.bam -o EV_dedup.intervals

GATK工具包 中的RealignerTargetCreator先建立indel區(qū)間文件仅财,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)intervals文件
參數(shù)解釋:
-T:使用的工具名

9. 對(duì)以上所得位置進(jìn)行重新對(duì)比

java -Xmx45g -jar GenomeAnalysisTK.jar -T IndelRealigner -R IRGSP_v4.fasta -I EV_dedup.bam -targetIntervals EV_dedup.intervals -o EV_dedup_realign.bam

GATK工具包 中的IndelRealigner對(duì)上一步建立的indel區(qū)域進(jìn)行reads重比對(duì)(indel會(huì)導(dǎo)致附近的錯(cuò)配,所以需要借由這一步降低indel附近的假陽(yáng)性)碗淌,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)重新比對(duì)過(guò)的bam文件盏求,可命名為EV_dedup_realign.bam

10. 進(jìn)行變異檢測(cè)

java -Xmx45g -jar GenomeAnalysisTK.jar -T UnifiedGenotyper -R IRGSP_v4.fasta -I EV_dedup_realign.bam -glm BOTH -stand_call_conf 30 -stand_emit_conf 10 -o LD.vcf

GATK工具包 中的UnifiedGenotyper對(duì)上述重新比對(duì)過(guò)的bam文件進(jìn)行變異檢測(cè),尋找variant亿眠,此步驟結(jié)束會(huì)產(chǎn)生一個(gè)vcf文件和一個(gè)idx文件

參數(shù)解釋:
-glm:選擇檢測(cè)的變異類型碎罚,“SNP、INDEL缕探、BOTH”皆可選魂莫,默認(rèn)為SNP还蹲,采用BOTH表示同時(shí)檢測(cè)兩者
-stand_call_conf:在變異檢測(cè)過(guò)程中用于區(qū)分低質(zhì)量變異位點(diǎn)和高質(zhì)量變異位點(diǎn)的閾值爹耗,高于其會(huì)被視為高質(zhì)量,低于其會(huì)標(biāo)注LowQual
-stand_emit_conf:在變異檢測(cè)過(guò)程中谜喊,所容許的最小質(zhì)量值潭兽。只有大于等于這個(gè)設(shè)定值的變異位點(diǎn)會(huì)被輸出到結(jié)果中。


寫(xiě)在最后面

  1. 運(yùn)行命令時(shí)斗遏,要注意使用的軟件山卦、輸入文件以及輸出文件的路徑,最好采用絕對(duì)路徑的命令輸入模式
  2. 由于過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生很多文件诵次,所以輸出文件要好好命名账蓉。每個(gè)文件是從哪一步得到的枚碗,最好標(biāo)上后綴,方便后續(xù)調(diào)用
  3. 我這里的GATK版本還是較舊的3.4版本铸本,現(xiàn)在最新的應(yīng)該是4.0版本肮雨。在4.0版本中去掉了RealignerTargetCreator、IndelRealigner箱玷、UnifiedGenotyper這幾個(gè)工具怨规,全部用HaplotypeCaller可以解決,具體的參數(shù)在運(yùn)行程序的時(shí)候help一下就可以看到了锡足,所以8 波丰、9、10三步驟可以用HaplotypeCaller代替
  4. 以上的GATK實(shí)戰(zhàn)步驟也是我在摸索中運(yùn)行的舶得,后續(xù)的數(shù)據(jù)分析還沒(méi)有進(jìn)行過(guò)掰烟,其中可能存在一定問(wèn)題,歡迎提出指正沐批,互相交流媚赖。
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