生信基礎(chǔ)知識(shí)復(fù)習(xí)之測(cè)序

劉小澤寫(xiě)于18.11.25

每學(xué)習(xí)一遍之前的知識(shí),總能從不同角度獲取一些觀(guān)點(diǎn)话侄,然后擴(kuò)增自己的知識(shí)庫(kù)亏推,這就是“知識(shí)迭代”

這次我也就是想到哪寫(xiě)到哪,把自己認(rèn)為重要的內(nèi)容梳理下年堆,用Q&A的形式展示吞杭,沒(méi)想到測(cè)序內(nèi)容這么多,所以先當(dāng)作第一部分吧

測(cè)序相關(guān)

Q1:生物體內(nèi)的DNA的ATCG核苷酸是怎么轉(zhuǎn)換成計(jì)算機(jī)識(shí)別模式的嘀韧?

ATCG結(jié)構(gòu)

首先要區(qū)分

這是ATCG的化學(xué)結(jié)構(gòu)篇亭,其中A、G結(jié)構(gòu)類(lèi)似锄贷,屬于嘌呤類(lèi)译蒂;C、T(U)結(jié)構(gòu)類(lèi)似谊却,屬于嘧啶類(lèi)柔昼,我們測(cè)序的目的就是區(qū)別這幾種結(jié)構(gòu)。人類(lèi)基因組中有30億個(gè)堿基炎辨,要想?yún)^(qū)分其中的四類(lèi)堿基捕透,一個(gè)個(gè)分析結(jié)構(gòu)肯定不靠譜,于是想到了使用顏色進(jìn)行區(qū)分,也就是“光信號(hào)”方法

利用光信號(hào)測(cè)序

Sanger測(cè)序乙嘀、Illumina末购、454等都是利用光信號(hào)。

光信號(hào)方法就是要讓每個(gè)堿基帶上顏色虎谢,就需要給每種堿基帶上特定的熒光基團(tuán)盟榴,熒光基團(tuán)在測(cè)序儀激光作用下被激發(fā),發(fā)出的光被照相機(jī)記錄下來(lái)婴噩,然后熒光基團(tuán)失效擎场,接著加下一個(gè)堿基(利用了illumina的“可逆阻斷終止技術(shù)”,簡(jiǎn)而言之几莽,就是:在堿基3‘端加一個(gè)阻斷基團(tuán)迅办,當(dāng)聚合成功之后,就不能在繼續(xù)3‘端加其他堿基了章蚣,這時(shí)利用激光捕獲熒光信號(hào)站欺,之后切掉熒光基團(tuán)和阻斷基團(tuán),讓下一個(gè)帶熒光的堿基繼續(xù)進(jìn)行)究驴。

另外還可以用“電信號(hào)” (例如英國(guó)牛津納米孔公司ONT的MinION測(cè)序儀以及18年被illumina以12億美金收購(gòu)的太平洋生物公司的SMRT技術(shù))镊绪。基本思想就是:4種堿基結(jié)構(gòu)不同洒忧,帶的電荷就不同蝴韭,在聚合的過(guò)程中,讓它們通過(guò)電極熙侍,產(chǎn)生不同的電信號(hào)榄鉴,利用電信號(hào)來(lái)區(qū)分【不過(guò)這種測(cè)序裝置的靈敏度要求要比光信號(hào)更嚴(yán)格,才可以檢測(cè)微小的電信號(hào)差別】

然后要規(guī)模

早起Sanger測(cè)序是利用了“末端終止技術(shù)”蛉抓,這樣準(zhǔn)確但是效率比較低庆尘,因此illumina開(kāi)發(fā)了“邊合成邊測(cè)序”,每合成一次就可以讀取一個(gè)堿基巷送,并且合成越長(zhǎng)驶忌,測(cè)序讀長(zhǎng)就越長(zhǎng)。這種技術(shù)就需要利用PCR進(jìn)行大規(guī)模的擴(kuò)增笑跛,但是我們知道付魔,PCR技術(shù)收到酶活性的影響是有合成限制的,不可能無(wú)限擴(kuò)增下去飞蹂,illumina給出的解決方案就是:“雙末端測(cè)序” 几苍,就是正向測(cè)一段,反向再測(cè)一段陈哑,這樣就在PCR循環(huán)一定的情況下妻坝,增加了測(cè)序讀長(zhǎng)

Q2:測(cè)序的基本流程是怎樣的伸眶?

以常用的illumina二代測(cè)序?yàn)槔篌w分為:建庫(kù)刽宪、cluster厘贼、測(cè)序三步

  • 建庫(kù)之前:首先進(jìn)行DNA樣本的質(zhì)量檢測(cè)【1. 最好取單倍體(二倍體或多倍體有等位的雜合位點(diǎn),測(cè)序時(shí)不容易分區(qū)哪種時(shí)物種真實(shí)存在的雜合位點(diǎn)纠屋,哪種時(shí)測(cè)序錯(cuò)誤導(dǎo)致的假陽(yáng)性 )涂臣;2. DNA純度要達(dá)到OD值要求(也就是DNA不能混雜蛋白質(zhì),對(duì)人和動(dòng)物最好用紅細(xì)胞提取DNA )售担;3. DNA樣本不能降解(因?yàn)闇y(cè)序時(shí)需要對(duì)樣本進(jìn)行隨機(jī)打斷,一般來(lái)講署辉,DNA越長(zhǎng)族铆,打斷的隨機(jī)性就越高,比如15K序列打斷成500bp文庫(kù)哭尝,這樣打斷的組合方式就很多哥攘,但1K的序列打斷成500bp文庫(kù),組合方式就很少材鹦。如果降解成小片段逝淹,就無(wú)法進(jìn)行隨機(jī)打斷);4. 測(cè)序量要夠桶唐,能滿(mǎn)足建庫(kù)要求(測(cè)序的數(shù)據(jù)量是由加入的樣本量決定的栅葡,并且為了重復(fù)需要保存?zhèn)浞荩?/p>

  • 建庫(kù): 先理解“文庫(kù)”(它是DNA片段的集合,將測(cè)序DNA隨機(jī)打斷就構(gòu)成了DNA文庫(kù))尤泽。建庫(kù)的過(guò)程可以想象成是硬盤(pán)格式化欣簇,出廠(chǎng)的硬盤(pán)(也就是未處理的樣本DNA)直接插入計(jì)算機(jī)(測(cè)序儀)是不被識(shí)別的,需要分區(qū)掛載(也就是檢測(cè)坯约、打斷熊咽、加接頭等操作)后才可以。

    第一步:隨機(jī)打斷
    這時(shí)的DNA是一條很長(zhǎng)的片段(比如幾百K的片段)闹丐,使用機(jī)械法横殴、酶接法、超聲波(常用)卿拴,然后設(shè)置打斷的大小如500bp衫仑,然后這個(gè)長(zhǎng)DNA就會(huì)斷成許多的500bp的短片段,就形成了500bp左右的文庫(kù)(需要注意:這里的500bp表示大部分片段在500bp左右巍棱,但并非每條片段都正正好好是500bp惑畴,可以存在400bp或者700bp)【常見(jiàn)的文庫(kù)還有170bp文庫(kù)、350bp文庫(kù)航徙、800bp如贷、2K、5K、6K等】一般1K以下屬于小片段文庫(kù)杠袱,1K以上是大片段文庫(kù)尚猿。文庫(kù)大小的值又叫作“插入片段長(zhǎng)度 Insert size”(這個(gè)值很重要,在序列拼接楣富、短序列比對(duì)中會(huì)經(jīng)常用到)

    第二步:電泳
    將一定范圍內(nèi)的DNA進(jìn)行回收凿掂,如果要500bp文庫(kù),可以回收300-800bp的膠

    第三步:3‘加A
    在3‘加上一個(gè)A堿基纹蝴,將原來(lái)平末端變成粘性末端庄萎,更容易在后續(xù)過(guò)程中連接引物和接頭

    第四步:加index標(biāo)簽
    這是一個(gè)6-8bp的堿基片段,用于區(qū)分不同的測(cè)序樣本√涟玻現(xiàn)在測(cè)序一條lane 能產(chǎn)生30G以上的數(shù)據(jù)糠涛,但是有的物種DNA沒(méi)這么大,為了減少機(jī)器空轉(zhuǎn)兼犯,可以將不同物種的DNA混合起來(lái)進(jìn)行測(cè)序忍捡,但是下機(jī)后如何區(qū)分提交給客戶(hù)呢?這就需要利用標(biāo)簽

    第五步:加接頭

    加接頭目的是將測(cè)序片段固定(或者叫“種”切黔,種花的zhong)在flowcell的lane上砸脊,防止被測(cè)序的液體沖走。接頭包括:P7接頭纬霞、P5接頭凌埂,其中P7接頭和lane上的一樣,P5和lane上互補(bǔ)险领,這樣的目的是為了后面的橋式擴(kuò)增

  • cluster: 這個(gè)詞是“簇”的意思侨舆,也就是富集序列。因?yàn)闇y(cè)序需要熒光信號(hào)绢陌,如果僅對(duì)一條序列進(jìn)行檢測(cè)挨下,那么信號(hào)很弱,識(shí)別錯(cuò)誤率會(huì)很高脐湾,如果對(duì)一簇相同的序列同時(shí)檢測(cè)某個(gè)位點(diǎn)的光信號(hào)玫鸟,那么準(zhǔn)確度就大大提高
    這個(gè)過(guò)程就是“橋式PCR”藐窄,原來(lái)一條鏈以指數(shù)增長(zhǎng)成為一簇“克隆”
    序列條數(shù)x測(cè)序讀長(zhǎng)=一次測(cè)序量

  • 測(cè)序:加入dNTP(與橋式PCR中加的普通dNTP不同,它的3‘被疊氮基團(tuán)修飾)、聚合酶附井。先從cluster同一條鏈的第一個(gè)堿基開(kāi)始測(cè)建邓,再到第n個(gè)堿基炊昆,直到測(cè)完整條鏈芒篷,得到reads1【注意這里才正式出現(xiàn)了reads這個(gè)名詞,意思就是:一個(gè)堿基一個(gè)堿基讀取】
    測(cè)完reads1孟岛,加入堿性溶液將剛才測(cè)序完的鏈解鏈沖掉瓶竭,加再入第二種測(cè)序引物督勺,正好reads2的測(cè)序引物結(jié)合位點(diǎn)在index序列旁,先讀取6-8個(gè)堿基測(cè)得index序列斤贰;
    然后合成原來(lái)測(cè)序鏈的互補(bǔ)鏈智哀,并切除原來(lái)測(cè)序鏈,還是按照原來(lái)方法測(cè)的reads2

測(cè)序完成后并沒(méi)有得到想要的ATGC堿基順序荧恍,而是一堆照片瓷叫,下面就是圖像處理轉(zhuǎn)換成有顏色的光點(diǎn)文件(二進(jìn)制BCL文件,即basecalling)送巡,其中包括測(cè)序儀編號(hào)摹菠、run序號(hào)、lane序號(hào)骗爆、tile號(hào)辨嗽、X/Y坐標(biāo)、index淮腾、reads1/2、堿基序列屉佳、質(zhì)量序列谷朝、是否通過(guò)質(zhì)量過(guò)濾(1為通過(guò);0表示質(zhì)量差)

Q3:已經(jīng)知道文庫(kù)有大片段文庫(kù)(1K以上)和小片段文庫(kù)武花,文庫(kù)多大就能測(cè)多大嗎圆凰?另外測(cè)序是雙端測(cè)150bp左右,那么中間還有一部分沒(méi)有測(cè)到体箕,這樣會(huì)不會(huì)有問(wèn)題专钉?基因組上的這部分區(qū)域會(huì)被忽略嗎?

首先累铅,不管構(gòu)建多大的文庫(kù)跃须,測(cè)序得到的都是兩端很短的序列(比如雙端150就是得到兩個(gè)150bp的reads);

其次中間測(cè)不通并不會(huì)有問(wèn)題娃兽,而且是非常正常的現(xiàn)象菇民!因?yàn)槲膸?kù)構(gòu)建是隨機(jī)打斷過(guò)程,所以即使第一條片段中間沒(méi)有被測(cè)到也沒(méi)關(guān)系投储,后面的其他片段一定能測(cè)到這中間的部分(因?yàn)橐淮螠y(cè)序過(guò)程會(huì)產(chǎn)生成百上千萬(wàn)條reads第练,而基因組就那么大)

另外,你可能會(huì)想:既然只能測(cè)兩端很短的一部分玛荞,那么小片段和大片段文庫(kù)的區(qū)別在哪娇掏?反正都測(cè)不完。其實(shí)勋眯,大片段文庫(kù)的目的婴梧,除了得到序列以外下梢,更重要的是,為了獲取片段的坐標(biāo)距離(即兩條reads之間的物理距離關(guān)系志秃,將會(huì)為序列拼接和基因組結(jié)構(gòu)變異檢測(cè)提供幫助) 怔球。當(dāng)然,目前大片段文庫(kù)還有一些問(wèn)題浮还,比如現(xiàn)在PCR手段不能擴(kuò)增太長(zhǎng)的片段竟坛,另外我們只能測(cè)兩側(cè)的很短的片段,那么中間合成出來(lái)卻不能測(cè)钧舌,造成了浪費(fèi)担汤!

但是這些問(wèn)題illumina給出了大片段文庫(kù)的解決辦法

在隨機(jī)打斷序列后,大片段比小片段文庫(kù)多了一個(gè)環(huán)化處理洼冻,經(jīng)過(guò)末端修復(fù)崭歧,再將一個(gè)線(xiàn)性長(zhǎng)片段頭部進(jìn)行生物素標(biāo)記,再進(jìn)行環(huán)化(即:把片段首尾連接成一個(gè)環(huán))【我們現(xiàn)在知道了:小片段文庫(kù)是pair end撞牢; 大片段文庫(kù)是mate pair
曾經(jīng)我也是為這兩個(gè)概念搞的頭暈轉(zhuǎn)向??

理解Mate pair

關(guān)于大小片段文庫(kù)的差別:

大小片段文庫(kù)的差別

Q4:為什么不能測(cè)完整的基因組率碾?

理想的情況是:基因組有多大,我們就能測(cè)多大

但事實(shí)是:我們提取的DNA就不是完整的一整條屋彪,而是斷成許多片段所宰,比如10M基因組提取出來(lái),可能也就剩一堆幾百K的片段⌒蠡樱現(xiàn)在可以做的就是對(duì)這些幾百K的片段隨機(jī)打斷測(cè)序仔粥;另外,目前二代測(cè)序基本都依賴(lài)PCR擴(kuò)增蟹但,因此限制了讀長(zhǎng)

Q5: 目前市面上一二三代測(cè)序并存躯泰,怎么選擇?

存在即合理华糖,因?yàn)闆](méi)有任何一種測(cè)序技術(shù)能勝任任何工作麦向,才會(huì)出現(xiàn)現(xiàn)在的局面。對(duì)于選擇困難癥患者來(lái)講缅阳,一般可以從測(cè)序讀長(zhǎng)磕蛇、通量、準(zhǔn)確性十办、價(jià)格角度考慮

不同測(cè)序簡(jiǎn)單了解

所以也能理解秀撇,為什么illumina是目前的龍頭,另外收購(gòu)Pacbio后它在三代的市場(chǎng)又可以一展拳腳了

Q6: GC bias是什么意思向族?

基因組正常的GC含量是35-65%呵燕,如果小于35%或者大于65%就屬于異常。我們知道AT是2個(gè)氫鍵連接件相,而GC是3個(gè)氫鍵再扭,因此如果GC含量太高氧苍,在PCR過(guò)程中解鏈需要的能量更高,導(dǎo)致模版鏈更難打開(kāi)泛范,默認(rèn)的溫度下让虐,DNA模版變性不完全;另外PCR產(chǎn)物難易結(jié)合到模版罢荡,DNA聚合酶也難以延伸赡突,結(jié)果就是出現(xiàn)非特異性條帶,不容易被擴(kuò)增区赵,因此也無(wú)從談及測(cè)序惭缰,最后基因組覆蓋不均勻,丟失部分信息

對(duì)于這樣的樣品笼才,可以構(gòu)建PCR-free文庫(kù) 漱受,但需要更多樣本量

Q7: 關(guān)于讀長(zhǎng)、插入片段大小的選擇

我們知道了小片段測(cè)序文庫(kù)中有多種規(guī)格可供選擇骡送,如:170bp昂羡、350bp、500bp摔踱、700bp等紧憾。讀長(zhǎng)的話(huà),在保證準(zhǔn)確性前提下昌渤,越長(zhǎng)越好,有利于序列拼接憔四。例如Miseq可以實(shí)現(xiàn)PE 300bp的讀長(zhǎng)膀息,如果選擇500bp文庫(kù)和Miseq PE300(效果可以和454差不多了),那么中間就會(huì)有100bp重疊區(qū)域了赵,發(fā)生了所謂的“片段測(cè)通”潜支,可以利用這個(gè)區(qū)域?qū)蓚€(gè)reads拼接起來(lái),形成更長(zhǎng)的序列柿汛。

文庫(kù)大小需要和reads讀長(zhǎng)相協(xié)調(diào)冗酿,對(duì)于較短的測(cè)序片段,文庫(kù)不能過(guò)大络断;對(duì)于De novo 拼接裁替,可以先使用小片段文庫(kù),然后轉(zhuǎn)為大片段文庫(kù)貌笨,并逐級(jí)增加文庫(kù)大小如2K弱判、6K、10K锥惋、20K等【目的就是合理使用重疊區(qū)域進(jìn)行逐級(jí)拼接】

Q8:為什么小片段文庫(kù)如500bp需要兩端分別測(cè)昌腰,而不能一次測(cè)通500bp呢开伏?

利用PCR反應(yīng)是可以實(shí)現(xiàn)的,就是一直擴(kuò)增遭商,把500bp全部測(cè)出來(lái)固灵。不能這么做的一個(gè)因素是:PCR中DNA聚合酶的活性會(huì)下降,因此測(cè)序錯(cuò)誤率會(huì)隨著測(cè)序長(zhǎng)度增加而增加 劫流;另外一個(gè)因素就是Phasing巫玻,按說(shuō)cluster中所有片段都要保持同步,第一次大家都加第一個(gè)堿基困介,第二次都加第二個(gè)堿基… 但實(shí)際上大审,總有幾個(gè)走的快或者走的慢(一次加兩個(gè)堿基或者這一次一個(gè)堿基也沒(méi)加),這些“離群”的堿基出來(lái)的熒光值就會(huì)帶給整體干擾

Q9:不同的測(cè)序座哩,不同的操作徒扶?

對(duì)于全基因組測(cè)序,就是按上面的測(cè)序步驟就好根穷;

對(duì)于轉(zhuǎn)錄組測(cè)序姜骡,就需要考慮RNA反轉(zhuǎn)錄的問(wèn)題,那么是先反轉(zhuǎn)錄再打斷還是先打斷后反轉(zhuǎn)錄呢屿良? 其實(shí)比較高效的方法是:先反轉(zhuǎn)錄后打斷圈澈。一般轉(zhuǎn)錄本比較短(小于2K),那么選擇文庫(kù)時(shí)就不能太大(比如尘惧,不能選800bp文庫(kù)康栈,因?yàn)?K的序列,打斷成800喷橙,隨機(jī)性不是很好)啥么,可以考慮小一些的文庫(kù)(300左右)

另外還有很多測(cè)序類(lèi)型:外顯子組、甲基化贰逾、小RNA悬荣、宏基因組等


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