2022-04-12-載體圖譜以及cas9原理學(xué)習(xí)

轉(zhuǎn)載自簡書作者:lurui 鏈接:http://www.reibang.com/p/043e011d9a26? 并加以修改,不做商業(yè)用途

LB全稱是left border??RB是right border, 一般標(biāo)有LB,RB的為雙源載體送滞。LB和RB也就是說,在這兩個(gè)邊界的中間的部分就是在轉(zhuǎn)化植物時(shí)可以整合到植物基因組上的片段.

CRISPR包括兩個(gè)部分:一個(gè)向?qū)NA(gRNA)和一個(gè)非特異性CRISPR結(jié)合核酸內(nèi)切酶(CRISPR-associated endonumclease即Cas9)地熄。向?qū)NA是一個(gè)短的合成RNA,由一段結(jié)合Cas9必需的scaffold序列和特定的約20nt的空載(spacer)或靶向(targeting)序列(靶位點(diǎn))組成红氯,其中靶向序列決定了用于修飾的基因靶標(biāo)莹汤。因此我們只需改變gRNA上的靶向序列即可改變Cas9的基因靶標(biāo)猜谚。CRISPR最初用于敲除各種細(xì)胞類型或生物體的靶向基因麻献,但對Cas9酶的改造已經(jīng)將CRISPR的應(yīng)用擴(kuò)展到選擇性激活或抑制靶向基因或純化特定的DNA區(qū)域,甚至可以和熒光顯微結(jié)合用于展現(xiàn)活細(xì)胞中的DNA症歇。

使用CRISPR/Cas9進(jìn)行敲除

通過靶向基因特異的gRNA和核酸內(nèi)切酶Cas9的共表達(dá)郎笆,CRSIPR/Cas9可用于產(chǎn)生敲除細(xì)胞或敲除動物。** 基因靶位點(diǎn)可以是任何滿足以下兩點(diǎn)條件的約20nt的DNA序列:**

? ? ?? ??該序列在基因組中是特異存在的忘晤。

? ??????靶位點(diǎn)緊鄰著PAM(Protospacer Adjacent Motif)區(qū)并位于PAM區(qū)上游题画。

PAM序列是結(jié)合靶標(biāo)必不可少的,具體序列取決于Cas9的種類(釀膿鏈球菌Cas9 5’NGG3’)德频。我們將關(guān)注釀膿鏈球菌Cas9苍息,因其目前廣泛使用于基因工程。一旦表達(dá)壹置,Cas9蛋白和gRNA將形成一個(gè)核糖體蛋白復(fù)合物块仆,這個(gè)復(fù)合物是通過gRNA的scaffold區(qū)域和Cas9上表面暴露帶正電荷的溝糟相互作用形成的兴垦。Cas9與gRNA的結(jié)合后構(gòu)象發(fā)生了改變,分子由無活性的非DNA結(jié)合構(gòu)象轉(zhuǎn)變?yōu)橛谢钚缘腄NA結(jié)合構(gòu)象。更重要的是gRNA上的靶位點(diǎn)序列仍未和靶標(biāo)DNA發(fā)生相互作用错邦。Cas9-gRNA復(fù)合體將任意地結(jié)合基因組上的PAM序列座咆,但是只有g(shù)RNA靶位點(diǎn)序列與靶標(biāo)DNA配對時(shí)峰弹,Cas9才能進(jìn)行切割(這段靶標(biāo)DNA)理卑。一旦Cas9-gRNA復(fù)合物結(jié)合到一段認(rèn)定的DNA靶標(biāo),在gRNA靶向序列3’端的“種子”序列開始使靶標(biāo)DNA退火余佃。如果種子序列與靶標(biāo)DNA序列配對暮刃,gRNA將持續(xù)的沿3’到5’端方向使靶標(biāo)DNA退火。

使用CRISPR/Cas9進(jìn)行敲除

只有當(dāng)gRNA靶位點(diǎn)序列與靶基因有足夠的同源性存在時(shí)爆土,Cas9才會作用切割靶基因椭懊。拉鏈?zhǔn)降耐嘶饳C(jī)制可能解釋了為什么靶標(biāo)上3’端種子序列上的錯(cuò)配會完全破壞對靶標(biāo)的切割,而5’端的錯(cuò)配有可能會對靶標(biāo)進(jìn)行切割步势。Cas9核酸酶有兩個(gè)功能性內(nèi)切酶區(qū):RuvC和HNH氧猬。當(dāng)Cas9與靶基因位點(diǎn)結(jié)合時(shí)發(fā)生了第二次構(gòu)象變化背犯,核酸酶功能區(qū)對靶標(biāo)DNA的反向鏈進(jìn)行定位切割。Cas9介導(dǎo)的DNA切割最后結(jié)果是目標(biāo)DNA(PAM序列上游約3~4nt)的雙鏈斷裂(double strand break盅抚,DSB)漠魏。

雙鏈斷裂后由以下兩種常規(guī)的修復(fù)途徑進(jìn)行修復(fù):

有效但易錯(cuò)的非同源末端連接途徑(NHEJ)

低效但高保真的同源性修復(fù)途徑(HDR)

NHEJ修復(fù)途徑是最活躍的修復(fù)機(jī)制,能快速的修復(fù)雙鏈斷裂妄均,但通常會在雙鏈斷裂位點(diǎn)產(chǎn)生小的插入缺失柱锹。NHEJ介導(dǎo)的雙鏈斷裂修復(fù)的隨機(jī)性具有重要的實(shí)用意義,因?yàn)镃as9和gRNA在細(xì)胞群體中的表達(dá)丛晦,將產(chǎn)生多種不同的突變。大多數(shù)情況下提陶,NHEJ引起的靶標(biāo)DNA上的小InDels烫沙,會導(dǎo)致閱讀框內(nèi)的氨基酸插入缺失,或者移碼突變引起的目標(biāo)基因上ORF提前終止隙笆。理想情況下锌蓄,在靶標(biāo)基因內(nèi)形成功能缺失性的突變。然而撑柔,對特定的突變細(xì)胞表型的敲除能力最終取決于殘存的基因功能的劑量瘸爽。

用Cas9的切口酶提高特異性

當(dāng)gRNAs設(shè)計(jì)準(zhǔn)確時(shí),CRISPR/Cas9具有很高的特異性铅忿,但是特異性依然是一個(gè)主要的關(guān)注點(diǎn)剪决,特別是當(dāng)CRISPR應(yīng)用于臨床時(shí)。CRISPR系統(tǒng)的特異性主要取決于gRNA靶向序列特異性如何檀训,即基因靶標(biāo)相比于基因組其余部分的情況柑潦。理想狀態(tài)下,gRNA靶向序列與靶標(biāo)DNA具有高度同源峻凫,而與基因組上其它位置沒有同源性渗鬼。(但)現(xiàn)實(shí)是,在基因組上荧琼,會有另外的位點(diǎn)與指定的gRNA靶向序列部分同源譬胎。這些位點(diǎn)被稱為“脫靶”,你在設(shè)計(jì)gRNA時(shí)需要考慮到這些位點(diǎn)命锄。

用Cas9的切口酶提高特異性

為了優(yōu)化gRNA的設(shè)計(jì)堰乔,CRISPR的特異性可以通過改造Cas9自身來得到提升。如先前討論那樣脐恩,Cas9通過兩個(gè)核酸酶功能區(qū)域浩考,RuvC和HNH,的結(jié)合活性來形成雙鏈斷裂被盈。每個(gè)核酸酶結(jié)構(gòu)域上精確的氨基酸殘基是已知的析孽,這些殘基序列對內(nèi)切酶的活性至關(guān)重要(在釀膿鏈球菌Cas9中D10A對HNH和H840A對RuvC)搭伤,Cas9酶的修正版已生成,它僅包含一個(gè)催化活性功能域(稱為“Cas9 nickase”)袜瞬。Cas9切口酶依然基于gRNA的特異性來結(jié)合DNA,但切口酶僅能切開DNA的一條鏈怜俐,形成一個(gè)切口“nick”,或使單鏈斷開,而不是雙鏈斷裂邓尤。使用完好的互補(bǔ)鏈作為模板拍鲤,DNA上的切口迅速地被HDR途徑(同源性修復(fù)途徑)修復(fù)。因此需要使用兩個(gè)切口酶來切割靶標(biāo)DNA的兩條鏈以形成雙鏈斷裂(這種通常被稱為“double nick”或者“dual nickase”CRISPR系統(tǒng))汞扎。這種需求迅猛地增加了靶特異性季稳,因?yàn)檫@和在足夠近的范圍內(nèi)雙鏈斷裂產(chǎn)生的兩個(gè)脫靶的nicks的方式截然不同。因此澈魄,如果特異性或者減少脫靶的影響是考慮的關(guān)鍵因素景鼠,那么就采用雙切口酶方法來產(chǎn)生兩個(gè)nick引起的雙鏈斷裂。為了獲得高特異性的基因編輯痹扇,切口酶系統(tǒng)也可以聯(lián)合HDR(同源性修復(fù)途徑)介導(dǎo)的基因編輯一起使用铛漓。

使用HDR進(jìn)行精確的改造

NHEJ介導(dǎo)的雙鏈斷裂修復(fù)不夠完美,通常會導(dǎo)致基因ORF閱讀框的中斷鲫构,HDR能用于產(chǎn)生特異性的核苷酸改變(這也是人們所說的基因“編輯”)浓恶,這種改變小到單核苷酸改變大到大片段插入(例如,添加一個(gè)熒光基團(tuán)或者tag)结笨。

為了利用HDR進(jìn)行基因編輯包晰,一段DNA”修復(fù)模板”序列需要和gRNA+Cas9蛋白/Cas9n蛋白一同轉(zhuǎn)入研究者感興趣的細(xì)胞中。修復(fù)模板必須包含所需編輯位點(diǎn)以及緊鄰靶標(biāo)的上下游同源序列(稱作左右同源臂)炕吸。每條同源臂的長度以及結(jié)合位點(diǎn)取決于想要進(jìn)行的改變的大小杜窄。修復(fù)模板可以是一個(gè)單鏈寡核苷酸/雙鏈寡核苷酸/雙鏈DNA質(zhì)粒,這因不同的應(yīng)用而不同算途。值得一提的是塞耕,修復(fù)模板在基因組DNA不能帶有PAM序列,否則修復(fù)模板將成為Cas9切割的合適目標(biāo)嘴瓤。例如扫外,PAM序列可以進(jìn)行突變處理,以至于不再出現(xiàn)廓脆,但是基因編碼區(qū)不受影響(也即筛谚,沉默突變)

使用HDR進(jìn)行精確的改造

即使在表達(dá)Cas9、gRNA和外源性修復(fù)模板的細(xì)胞中停忿,HDR效率通常也比較低(低于修飾等位基因的10%)驾讲。因此,一些實(shí)驗(yàn)室人為地嘗試加強(qiáng)HDR,有的是在HDR起作用時(shí)同步化細(xì)胞周期吮铭,有的是通過化學(xué)的或遺傳學(xué)的抑制基因來參與NHEJ时迫。HDR的低效性有許多重要的實(shí)用意義。首先谓晌,因?yàn)镃as9的切割效率相對較高掠拳,而HDR效率相對較低,一部分Cas9引導(dǎo)的雙鏈斷裂被NHEJ修復(fù)纸肉。也就是說溺欧,最后細(xì)胞群體中會包含一些野生型等位基因,NHEJ修復(fù)的等位基因柏肪,和/或一些所需的HDR編輯等位基因姐刁。因此,需要通過實(shí)驗(yàn)來驗(yàn)證所需的編輯是否存在烦味,如必要的話聂使,對所需編輯的克隆進(jìn)行分離。

實(shí)驗(yàn)方案—pBUE411-2gR PCR鑒定及測序確認(rèn)(以雙靶為例做個(gè)簡單介紹)

1. 登錄到網(wǎng)站http://www.genome.arizona.edu/crispr/CRISPRsearch.html拐叉,篩選靶點(diǎn)岩遗。靶點(diǎn)最好帶酶切位點(diǎn)【Cas9切割點(diǎn)(離PAM/NGG 3bp)位于酶切位點(diǎn)中】扇商。也可以手動設(shè)計(jì)靶點(diǎn)凤瘦,然后到http://www.rgenome.net/cas-offinder/網(wǎng)站評估脫靶情況。


實(shí)際上應(yīng)該是選第一個(gè)NGG案铺,但是我們選用第二個(gè)蔬芥,增加范圍,看看最大的可能的脫靶情況



用4個(gè)錯(cuò)配控汉,看看靶點(diǎn)的脫靶情況


這是所有的可能靶向的位點(diǎn)笔诵,進(jìn)一步篩選高危靶點(diǎn)

安裝PAM,前面10bp特異性序列去搜索? TAGAGACGAT



再去找這些靶點(diǎn)是否是某些基因的cds區(qū)姑子,若不在就剛好合適了

2. 設(shè)計(jì)引物乎婿,引物結(jié)構(gòu)如下:

MT1T2-F: AATAATGGTCTCAGGCGNNNNNNNNNNNNNNNNNNN

MT1T2-F0: GNNNNNNNNNNNNNNNNNNNGTTTTAGAGCTAGAAATAGC??

(實(shí)際也可以將F,F(xiàn)0可以合并為街佑,F(xiàn)1:ATAATGGTCTCAGGCGNNNNNNNNNNNNNNNNNNNGTTTTAGAGCTAGAAATAGC

R0谢翎,R合并:R1:TTATTGGTCTCTAAACNNNNNNNNNNNNNNNNNNNCGCTTCTTGGTGCC

MT1T2-R0: NNNNNNNNNNNNNNNNNNNCGCTTCTTGGTGCC

MT1T2-R: ATTATTGGTCTCTAAACNNNNNNNNNNNNNNNNNNN

將1個(gè)19-nt靶點(diǎn)序列替換引物F0/BsF中的19-nt N;另一個(gè)19-nt靶點(diǎn)的倒轉(zhuǎn)互補(bǔ)序列替換-R0/BsR中的19-nt N沐旨。

Eg:將F和F0 合并 為PRP4-F1:ATAATGGTCTCAGGCGGGAAAGGCATAGAGACGATGTTTTAGAGCTAGAAATAG

PRP4-R1:

TTATTGGTCTCTAAACTTGGATCCGATCTACTATGCGCTTCTTGGTGCCGC

3. PCR擴(kuò)增:以稀釋100倍的pCBC-MT1T2為模板進(jìn)行四引物PCR擴(kuò)增森逮。-BsF/-BsR為正常引物濃度;-F0/-R0稀釋20倍磁携。? 這里F0/R0褒侧,F(xiàn)R 一起擴(kuò)增就是為了讓F0R0先擴(kuò)增,再用FR擴(kuò)增出目標(biāo)條帶,應(yīng)該是之前沒法設(shè)計(jì)出那么長的條帶闷供,現(xiàn)在直接用F1R1直接擴(kuò)增烟央。


4. 純化回收PCR產(chǎn)物,建立如下酶切-連接體系(restriction-ligation):

方法一:

成分 體積 反應(yīng)條件

1. PCR片段(964-bp)? ?????????2ul

2. pBUE411? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 2ul

3. 10xNEB T4Buffer? ?????????1.5ul

4. 10xBSA? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?1.5ul

5. BsaI (NEB)? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?1ul

6. T4 Ligase (NEB)/高濃度? 1ul

7. ddH2O? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?6ul

8. Total ????????????????????????????????15ul

5 hours at 37°C

5 min at 50°C

10 min at 80°C

不要加石蠟油

方法二:【自文獻(xiàn)Analytical Biochemistry 437 (2013) 172–177】

Restriction-ligation reaction

Purified PCR products? ? ? ? ? ? ? ? ? ? each 1-3 μl (20-50 ng)

10x ligase buffer (Promega)? ? ? ? ? ? ? ? 1 μl

T4 DNA ligase (Promega, HC, 20 u/μl)? ? ? 0.5 μl (10U)

BsaI (NEB, 10 u/μl)? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 0.5 μl (5U)

Sterile water? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? to 10 μl? ? ?

Incubate at 37°C for 2 minutes and 16°C for 5 minutes, both steps are repeated 50 times, followed by incubation for 5 minutes at 80°C (heat inactivation).

5. 取5ul轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)这吻。Kan板篩選吊档。

OsU3-FD3+TaU3-RD=831bp菌落PCR鑒定(表明轉(zhuǎn)化成功),OsU3-FD3和TaU3-FD2測序確認(rèn)(看看序列是否正確)唾糯。


注1:菌落PCR及測序引物:

OsU3-FD3 GACAGGCGTCTTCTACTGGTGCTAC

TaU3-RD: CTCACAAATTATCAGCACGCTAGTC [rc: GACTAGCGTGCTGATAATTTGTGAG]

TaU3-FD: TTAGTCCCACCTCGCCAGTTTACAG

TaU3-FD2: TTGACTAGCGTGCTGATAATTTGTG




在addGENE網(wǎng)站上找的質(zhì)粒介紹

基于CRISPR/Cas的植物基因組編輯和基因調(diào)控;?表達(dá)3×FLAG-NLS-zCas9-NLS怠硼,目標(biāo)序列插入的gRNA支架(OsU3啟動子),Bar抗性 ?

關(guān)于3*FLAG標(biāo)簽

1. 這幾種形式的FLAG肯定是有不同的移怯,至少長度不同香璃。為什么要構(gòu)建長度不同的FLAG標(biāo)簽?zāi)兀渴沁@樣的舟误,大多數(shù)情況下FLAG標(biāo)簽會構(gòu)建到蛋白的N端或者C端葡秒,而且大多數(shù)情況下蛋白的N端或者C端是游離在蛋白表面的,那么在這種情況下FLAG和3xFLAG沒有什么區(qū)別嵌溢,抗體都能結(jié)合得到眯牧。但是也有時(shí)候蛋白末端會被折疊到蛋白內(nèi)部,或者被其他結(jié)合蛋白所遮蔽赖草,那么更長的FLAG更有利于抗體結(jié)合表位的暴露学少,從而被抗體所結(jié)合。2. 這幾種形式都有相同的地方秧骑,就是它們都含有DDDDK版确,而這個(gè)通常是FLAG抗體的結(jié)合表位(抗體結(jié)合表位長度一般為4-7個(gè)氨基酸),所以對大家常用的FLAG抗體來說乎折,這幾種標(biāo)簽沒有什么區(qū)別绒疗,都可以識別。3. 3xFLAG會的抗體結(jié)合信號會不會比1x的更強(qiáng)骂澄?我認(rèn)為不會吓蘑,抗體結(jié)合的表位長度一般4-7個(gè)氨基酸,加上抗體本身非常巨大坟冲,抗體產(chǎn)生的空間位阻容不下第二個(gè)抗體結(jié)合在同一個(gè)3xFLAG上磨镶。

NLS

核定位序列(Nuclear localization sequence)或者核定位信號--蛋白質(zhì)的一個(gè)結(jié)構(gòu)域,通常為一短的氨基酸序列樱衷,它能與入核載體相互作用棋嘲,使蛋白能被運(yùn)進(jìn)細(xì)胞核。

f1 origin是f1噬菌體基因組DNA的復(fù)制區(qū)序列(一段DNA序列)矩桂,可引導(dǎo)單鏈DNA復(fù)制過程沸移。 pUC origin是質(zhì)粒pUC的復(fù)制區(qū)序列(一段DNA序列)痪伦,可引導(dǎo)雙鏈DNA復(fù)制過程。

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