ChIP-seq和 CUT&Tag、CUT&RUN講座視頻筆記

系列筆記基于達(dá)澈生物講座視頻粮宛,從中初步學(xué)習(xí)了解生信分析中常遇到的組學(xué)分析技術(shù)滞时。
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0坪稽、總綱

  • ChIP-seq是探究有特定蛋白結(jié)合的DNA片段曼玩,即蛋白與DNA特定區(qū)域的互作關(guān)系;
  • CUT&RUN窒百、CUT&TAG是近些年提出的兩個更高效的實驗設(shè)計黍判。


    image from ENCODE

1、ChIP-seq(Chromatin Immuno-Precipitation)

染色體免疫共沉淀反應(yīng)

1.1 上游實驗原理

A 實驗步驟

參考下圖篙梢,主要分為5步

(1)甲醛交聯(lián)

  • 將目標(biāo)蛋白(根據(jù)實驗?zāi)康亩ǎ┚o密綁定到其可以與DNA連接的位置上顷帖;
  • 目標(biāo)蛋白是我們感興趣的蛋白,例如有特定修飾的組蛋白渤滞;
  • 我想就是為避免下一步超聲時脫離贬墩;

(2)超聲打斷

  • 將所有DNA打斷成一定長度的小片段;
  • 所有片段可分為兩大類:有特定蛋白結(jié)合的妄呕,無特定蛋白結(jié)合的


    5 steps of ChIP-seq

(3)片段富集

  • 根據(jù)目標(biāo)蛋白陶舞,添加特異抗體,形成抗體與目標(biāo)蛋白免疫沉淀復(fù)合物趴腋;
  • 然后用磁珠分離富集

(4)文庫構(gòu)建

  • 去交聯(lián)吊说,純化DNA;
  • 加接頭优炬,擴(kuò)增

(5)測序

  • illumina二代測序

B 技術(shù)難點

(1)實驗步驟較多颁井,參數(shù)設(shè)置優(yōu)化

  • 例如交聯(lián)、超聲等參數(shù)設(shè)置需要實驗摸索蠢护;
  • 整個實驗周期大概三天左右雅宾。

(2)抗體選擇

  • 對于任何一種特定的靶抗原,都有不止一種有效抗體葵硕;
  • 如何篩選高質(zhì)量的抗體是很重要的(因為不做實驗眉抬,就不細(xì)述了)


    磁珠對蛋白免疫沉淀復(fù)合物的富集.png

(3)結(jié)果解讀

chip-seq的結(jié)果有時存在背景高贯吓、非特異性的peak的缺點;即目標(biāo)DNA片段分布不是很集中蜀变。原因可能如下

  • 甲醛過度交聯(lián)導(dǎo)致蛋白與非目標(biāo)DNA位置結(jié)合悄谐;
  • 非特異性DNA與Bead直接結(jié)合(solution:可用Salmon Sperm DNA封閉);
  • 抗體特異性不強(qiáng)库北;
  • ........

C 對照設(shè)計

(1)input對照(必做)

即相同實驗條件下爬舰,進(jìn)行到第二步超聲打斷的結(jié)果。目的主要是

  • 可以驗證DNA斷裂的效果(片段長度分布)


    sonication超聲
  • 可根據(jù)input中靶序列的含量以及染色質(zhì)沉淀中的靶序列含量寒瓦,按照取樣比例換算出CHIP的效率情屹;
(2)陽性對照(選做)

主要目的是驗證chip-seq實驗理論上有目標(biāo)蛋白結(jié)合就會出現(xiàn)peak的

  • 一般使用anti-RNA PolymeraseⅡ抗體;
  • 因為該抗體是通用轉(zhuǎn)錄因子杂腰,在所有細(xì)胞中都能結(jié)合基因的核心啟動子區(qū)垃你。因此理論上chip后都會有條帶。
(3)陰性對照(選做)

主要目的是驗證chip-seq實驗理論上沒有目標(biāo)蛋白結(jié)合就會不出現(xiàn)peak的

  • 一般用普通的IgG抗體

陽性喂很、陰性對照的例圖可見筆記最后

1.2 下游數(shù)據(jù)分析

參考下圖惜颇,chip-seq的數(shù)據(jù)分析常規(guī)流程如下

(1)RAW data→Clean data

  • 質(zhì)控(QC);
  • 去接頭(cutadapt)

(2)Alignment

  • bwa少辣、bowties等biosoft官还,重點關(guān)注mapping rate
  • visualization(deepTools/IGV)

(3)Peakcalling

  • ChIP-seq的必做步驟,研究蛋白bindinng的DNA片段相對集中區(qū)域
  • MACS2軟件毒坛,之前的關(guān)于MACS筆記見鏈接
  • 根據(jù)peak分布結(jié)果可進(jìn)一步嘗試motif analysis(Homer),gene annotation(Homer)→GO/KEGG(R)林说,并且聯(lián)和RNA-seq DEG煎殷、ATAC-seq等


    image from 達(dá)澈生物

2、CUT&RUN腿箩、CUT&TAG

  • ChIP-seq主要用超聲打斷的方式切割DNA片段豪直,
  • 近些年出現(xiàn)的CUT&RUN、CUT&TAG則主要利用酶切的方式

2.1 cut&run

cleavage under targets and release using nuclease
大致步驟如下

  • (1)抗體結(jié)合綁在DNA上的靶向蛋白珠移;
  • (2)Protein A-MNase酶復(fù)合物與抗體交聯(lián)弓乙;

MNase酶為DNA內(nèi)切酶,可切斷所識別到的DNA片段

cut&run
  • (3)鈣離子激活MNase酶钧惧,剪下目標(biāo)蛋白所連的目標(biāo)DNA片段暇韧;
  • (4)蛋白復(fù)合物富集

2.2 cut&tag

cleavage under targets and tagmentation
大致步驟如下

  • (1) 一抗結(jié)合目標(biāo)蛋白,二抗結(jié)合一抗(信號放大)浓瞪;
  • (2) 加入protein A-Tn5酶復(fù)合物

Tn5酶是轉(zhuǎn)座酶懈玻,ATAC實驗常用,完成剪切乾颁、粘貼的作用涂乌;

cut&tag
  • 剪下目標(biāo)蛋白所連接的目標(biāo)DNA片段艺栈,并在兩邊加上接頭(建庫更方便)

2.3 相比于ChIP-seq的優(yōu)勢

  • 實驗材料(細(xì)胞)使用量少,適合珍貴樣品湾盒;
  • 不需要超聲打斷湿右,因此也可不做甲醛固定(前提是新鮮細(xì)胞);
  • 實驗周期短罚勾,兩天左右毅人;
  • 數(shù)據(jù)背景信號非常低!可參考一篇paper的比較
image from paper
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