隨著單細胞測序技術(shù)的發(fā)展奸汇,單細胞的應(yīng)用方向也由醫(yī)學(xué)領(lǐng)域逐漸向農(nóng)學(xué)領(lǐng)域拓展沥寥,樣本類型也不再局限于人卸察、鼠或模式物種她倘,而逐漸發(fā)散到各種各樣的經(jīng)濟動植物璧微。前幾期推文我們介紹了畜牧類物種單細胞的制備與經(jīng)驗,本期我們將走入植物樣本硬梁,探索植物的單細胞制備研究前硫。目前市面上常見的植物單細胞制備方法有兩種,一是原生質(zhì)體制備荧止,二是植物抽核屹电。
植物原生質(zhì)體制備
植物單細胞分析主要依賴于細胞壁酶解產(chǎn)生原生質(zhì)體阶剑,通過不同消化酶、不同配比危号、不同酶解時間的組合牧愁,實現(xiàn)原生質(zhì)體的制備,從而進行后續(xù)單細胞的上機研究外莲。諾禾致源根據(jù)已有文獻參考和大量的實戰(zhàn)積累猪半,研發(fā)了較為全面的原生質(zhì)體制備方法,讓我們以兩篇文獻為例偷线,看一看植物原生質(zhì)體的制備方案磨确。
花生葉片
1. 花生幼苗室溫(25℃)下,黑暗條件下生長一周声邦,收集幼苗葉片乏奥;
2. 將葉片切成1-2mm的條狀,加入含有30mL酶溶液的試管中亥曹,酶溶液由3%纖維素酶R-10邓了、1.5%離析酶R-10、0.3%果膠酶Y-23媳瞪、0.25% BSA驶悟、5 mm MES和8% (w/v)甘露醇(不含Ca2+和Mg2+)組成,在25°C下以40 rpm搖2小時材失;
3. 然后用40μm細胞濾器過濾細胞痕鳍;
4. 臺盼藍染色法檢測細胞活性,顯微鏡檢測細胞濃度龙巨;
5. 原生質(zhì)體在8% (w/v)甘露醇溶液中重懸笼呆,上樣10x Genomics微流控芯片。
參考文獻:Single-cell RNA-seq describes the transcriptome landscape and identifies critical transcription factors in the leaf blade of the allotetraploid peanut (Arachis hypogaea L.), DOI: 10.1111/pbi.13656
擬南芥根
1. 播種后五天旨别,每個樣品收集1,000-3,500個初級根诗赌,距離根尖約0.5cm處剪斷;
2. 樣本放入一個直徑35mm的培養(yǎng)皿中秸弛,含有70μm細胞過濾器和4.5mL酶解液铭若;
3. 酶解液包含1.25% [w/v]纖維素酶,0.1%離析酶递览,0.4 M甘露醇叼屠,20 mM MES(pH 5.7),20 mM KCl绞铃,10 mM CaCl2镜雨,0.1%牛血清白蛋白和0.000194% (v/v)巰基乙醇;
4. 在搖床上以25℃儿捧、85rpm的條件下消化1小時荚坞,偶爾攪拌挑宠;
5. 將細胞溶液通過40μm的細胞過濾器過濾兩次,并以500xg的速度離心5分鐘颓影;
6. 用1mL洗滌液各淀,包括0.4 M甘露醇,20 mM MES(pH 5.7)诡挂,20 mM KCl揪阿,10 mM CaCl2,0.1%牛血清白蛋白和0.000194% (v/v)巰基乙醇重懸沉淀物咆畏,并在500xg的速度離心3分鐘南捂;
7. 沉淀用洗滌液重懸至約1000個細胞/μL的終濃度,上樣10x Genomics微流控芯片旧找。
參考文獻:A single-cell Arabidopsis root atlas reveals developmental trajectories in wild-type and cell identity mutants, DOI: 10.1016/j.devcel.2022.01.008
植物抽核制備
抽核的優(yōu)點在于能夠從難以酶解消化的植物組織中獲取細胞核內(nèi)的信息進行單細胞研究溺健,對于難以進行原生質(zhì)體制備的組織、原生質(zhì)體制備后直徑過大钮蛛,或者需要排除應(yīng)激反應(yīng)影響的研究鞭缭,可以采用植物抽核的方式,通常情況下植物抽核可以搭配流式細胞儀去除碎片魏颓,防止儀器堵塞實驗失敗岭辣。
玉米根尖
1. 組織放置在培養(yǎng)皿中,加入500μL LB01緩沖液中:15mM Tris pH 7.5甸饱,2mM EDTA沦童,0.5mM Spermine,80mM KCl叹话,20mM NaCl偷遗,15mM 2-ME,0.15% TrixtonX-100驼壶,切碎處理2分鐘氏豌;
2. 通過兩層miracloth過濾均質(zhì)化的組織;
3. 用DAPI染色至最終濃度約1μM热凹,并加載到流式細胞術(shù)儀器上泵喘;
4. 每個樣品分選120,000個細胞核,分別裝入四個收集管(每個管30,000個細胞核)般妙,每個管含有200μL LB01纪铺;
5. 分離的細胞核在搖床離心機中離心沉淀(5分鐘,500 rcf)股冗,重懸于10μL LB01中霹陡,混合后在帶熒光顯微鏡的血細胞計數(shù)板上進行觀察和蚪;
6. 將細胞核懸液離心沉淀(5分鐘止状,500 rcf)烹棉,并重懸于稀釋的細胞核緩沖液(10X Genomics)中,最終達到3,200個細胞核/μL的終濃度怯疤。
參考文獻:A cis-regulatory atlas in maize at single-cell resolution, DOI: 10.1016/j.cell.2021.04.014
玉米葉片
1.10日齡幼苗浆洗,使用顯微鑷子機械剝離大約100個幼苗的葉下表皮,并收集幼苗1cm段葉基集峦,剝離的表皮和葉基樣品在冰水中保存伏社,以便進行核分離的前處理;
2.材料吸干后(0.3g鮮重)置于一個5cm直徑的一次性無菌塑料培養(yǎng)皿中塔淤,含2mL Galbraith緩沖液摘昌,并添加了2%牛血清白蛋白、20μL二硫蘇糖醇(DTT)(1 M DTT在DEPC處理的雙蒸餾水中)高蜂、20μL RNase抑制劑1和10μL RNase抑制劑2聪黎;
3.用新的雙刃刀切碎經(jīng)過吸干的材料,將均質(zhì)物通過30μm的細胞過濾器分別過濾备恤,添加PI至最終濃度為50 μg/mL稿饰;
4.使用70或75μm的噴嘴進行細胞核的流式分選,0.01M磷酸鹽緩沖液(DEPC處理的水)作為鞘液露泊,通常在5-10分鐘內(nèi)喉镰,可分選出大約40,000個細胞核;
5.細胞核分選到一個預(yù)先用2% BSA漂洗過的2mL蛋白質(zhì)LoBind離心管惭笑,通過相差顯微鏡預(yù)估細胞核完整性侣姆,使用細胞計數(shù)器確認細胞核濃度。
參考文獻:The maize single-nucleus transcriptome comprehensively describes signaling networks governing movement and development of grass stomata, DOI: 10.1093/plcell/koac047
植物的送樣建議
植物樣本要求
寄送活株沉噩,可以使用木架固定培養(yǎng)瓶及幼苗铺敌,以保證運輸途中植物完整性及狀態(tài)的穩(wěn)定性,用于制備的目標組織量建議>2g
制備樣本
上機前建議檢測指標
a.捕獲上機的液體用不含Ca2+屁擅,Mg2+的緩沖液
b.AOPI計數(shù)偿凭,活性指標>60%,實驗背景相對干凈
關(guān)于特殊樣本類型
含淀粉樣本無法進行原生質(zhì)體制備派歌,只能抽核處理
如樣本涉及真菌侵染弯囊、細菌處理、病毒胶果、蟲害等處理匾嘱,需要確認樣本詳細情況,是否存在寄生早抠,是否存在殘留霎烙,如有殘留、影響別的物種,具有產(chǎn)生交叉污染的風(fēng)險悬垃,則無法進行實驗