我們最近都在聊CRISPR-Cas9技術和TP53的關系,最近聊的兩篇文章內(nèi)容可以簡述為:(1)CRISPR-Cas9誘導DSB芜果,DSB激活P53鞠呈,導致細胞死亡;(2)CRISPR-Cas9無法使得P53 mutant細胞死亡右钾,從而富集P53突變細胞蚁吝。那么CRISPR-Cas9是依賴DNA修復的技術,TP53是DNA修復的上游信號舀射,是否CRISPR-Cas9對DNA修復功能也有影響呢窘茁?這一次,我們將解讀一篇關于CRISPR-Cas9技術應用中脆烟,P53狀態(tài)和DNA修復之間的關系山林。目前的思路圖如下:
文獻解讀:CRISPR-Cas9在不同狀態(tài)P53細胞中的DNA損傷修復情況
選文:今天挑的文章和我們講的paper 1是同一天發(fā)表在Nature Medicine雜志上的。paper 1(下圖上)作為letter形式發(fā)表而今天的文章是一個brief communication(下圖下)邢羔。
1. 研究背景和問題
Cas9誘導的DNA雙鏈斷裂(DSBs)可通過非同源端連接(NHEJ)或同源重組(HDR)進行修復驼抹。修復機制的選擇取決于細胞周期的不同階段,在G1時NHEJ占主導地位(NHEJ在整個細胞周期中都有)拜鹤,而在DNA復制時HDR開始有效框冀。這就導致依賴HDR修復機制的精準基因編輯效率低于NHEJ機制,這對于大部分腫瘤細胞來說HDR效率稍微低一點沒什么敏簿,因其本身效率就很高明也。但對于正常細胞系,尤其是干細胞等惯裕,其HDR精準編輯難度非常大温数。雖然近年來已可通過(1)提高修復DNA模板濃度,(2)添加NHEJ抑制劑以及(3)優(yōu)化轉染等方式增加精準編輯效率蜻势。然<u>而對于正常的撑刺、未轉化的人類細胞的低精準編輯效率,其機制仍然未知咙边。</u>
2. 實驗設計和結果
2.1 經(jīng)典CRISRP文庫篩選:dropout screens
<u>方法介紹:</u>下圖a是一個經(jīng)典的CRISPR文庫篩選策略猜煮。選一定數(shù)量的細胞,轉導CRISPR慢病毒文庫并經(jīng)抗生素篩選后將細胞分成兩份败许,一份是initial sample(初始樣本),一份是終止樣本(細胞培養(yǎng)一定時間后/或經(jīng)過實驗處理)淑蔚。通過比對初始樣本和終止樣本的sgRNA文庫:(1)某些sgRNA已不再被檢測到或者含量非常低市殷,則可說明這些sgRNA編輯的基因是生長必須的基因;(2)某些sgRNA含量 比例增加刹衫,則一方面可能是其他sgRNA量的減少醋寝,導致這部分細胞比例增加搞挣,也有可能是這些sgRNA對調(diào)控細胞生長的基因進行了敲除或者抑制。
結果:
如下左圖b:作者選用永生化的視網(wǎng)膜色素上皮細胞 (retinal pigment epithelium音羞,RPE)進行CRISPR文庫篩選:部分細胞在被敲除生長必須基因后應該死亡囱桨,則針對這些基因的sgRNA不應被檢測到,而他們檢測到了嗅绰。對sgRNA進行統(tǒng)計后發(fā)現(xiàn)P53-P21-RB1等基因的sgRNA序列高度富集舍肠。因此<u>作者推測是P53-P21-RB1軸的失常,導致細胞在被敲除生長必須基因后仍能存活窘面。</u>
如下右圖c:為驗證P53-P21RB1軸失常對維持細胞生存的作用翠语,作者對RPE P53+/+和P53-/-細胞進行全基因組CRISPR文庫篩選,將對細胞生長必須的核糖體基因進行分析:(1)P53-/- RPE 有相當一部分細胞的核糖體基因含量很少财边,說明在沒有正常核糖體基因的情況下仍能存活肌括。(2)而P53+/+ RPE細胞都有較高含量的核糖體基因,說明被敲除核糖體基因的細胞已經(jīng)死亡酣难〉玻總得來說,在該死的時候憨募,p53-/-細胞不死慧库。經(jīng)過前面兩篇文章的解說,<u>我們很容易認為這是由于P53缺失馋嗜,導致凋亡誘導失敗造成的齐板,但是不是呢</u>?
解讀分析:在正文中有很短的一段話銜接葛菇,雖然結果在中文和補充材料中我都沒找到甘磨。作者發(fā)現(xiàn)P21 sgRNA的富集僅僅出現(xiàn)在P53+/+中,在P53-/-則無P21 sgRNA富集眯停。因此作者認為济舆,P21的缺失僅僅在P53+/+的時候,才能給細胞提供生長競爭優(yōu)勢莺债。由于P21是P53調(diào)節(jié)細胞周期的重要下游因子滋觉,因此作者假設,CRISPR-Cas9誘導DSBs觸發(fā)了通過p21和pRB介導的短暫的齐邦、p53依賴的細胞周期阻滯椎侠,而與靶向位點無關。注意這里提到了與靶點無關措拇,即<u>只要達到細胞周期阻滯效果皆可我纪,不一定是P53缺失</u>。這里就為后面的研究做了前因后果鋪墊,這也是本文與同一天發(fā)表的另外一篇文章的不同之處浅悉。
2.2 P53狀態(tài)對細胞周期的影響
方法介紹:
(1)上文提到短暫的細胞周期阻滯趟据,因此作者選用了瞬轉的CRISPR-Cas9方法:即直接將Cas9蛋白和sgRNA的復合物投放到細胞中,這個復合物叫做核糖核蛋白(ribonucleoprotein术健,RNP)汹碱。
(2)此外,還設計依賴HDR的CRISPR-Cas9精準修復實驗BFP-GFP實驗荞估,如下圖b所示:細胞原本帶有mutant GFP-2A-BFP元件咳促,由于GFP是突變的無法發(fā)光,因此細胞只表達藍色熒光泼舱,通過HDR精準修復mutant-GFP后等缀,被修復的細胞同時發(fā)藍色和綠色熒光。
解讀分析:從上圖a結果可看到娇昙,經(jīng)由RNP瞬時CRISPR-Cas9基因編輯時尺迂,P53-/-細胞其周期沒有特別改變,而p53+/+細胞則出現(xiàn)G1期增加(NHEJ增強)冒掌,G2/S期減少的情況(HDR減弱)噪裕。
2.3 細胞周期與HDR精準編輯的關系
鑒于HDR主要在S期中激活,作者認為P53WT細胞的由于P53激活導致G2/S期細胞減少股毫,從而依賴HDR 的CRISPR-Cas9精準編輯效率不如p53-/-細胞膳音。為了驗證這個假設,使用了上圖b中的BFG-GFP實驗铃诬。從下圖結果可看到祭陷,確實p53-/-組的綠色熒光細胞更多,證明p53-/-的精準編輯更多趣席。
同時作者使用細胞周期抑制劑--CDK4/6抑制劑palbociclib兵志,將細胞周期阻滯在G1期,此時G2/S期細胞會變少宣肚,可以看到HDR精準編輯的效率下降想罕。這一個實驗非常重要,因為P53+/+細胞的低編輯效率也可以是因為細胞的死亡霉涨,就如前面paper1我們提到的那樣按价,<u>這里使用細胞周期抑制劑,使得兩者的相關關系笙瑟,進一步往因果關系靠攏楼镐。</u>
2.4 驗證性實驗:P53激活劑和抑制劑
接下來是兩個在P53研究中非常常用的抑制劑和激活劑。
P53抑制劑MDM2:如下圖e逮走,P53在常規(guī)情況下被MDM2泛素化鸠蚪,最后被運送到蛋白酶體降解今阳,這就是P53在正常細胞中維持非常低水平的原因师溅。而外加MDM2則可降低Cas9誘導DSB時誘導的P53水平茅信,使得HDR精準修復效率更高。
P53激活劑Nutin3a:如下圖f墓臭,Nutin3a通過抑制MDM2作用蘸鲸,使得P53不再被泛素化,P53蛋白得以穩(wěn)定于細胞中窿锉,此時HDR精準編輯效率降低酌摇。這部分的結果進一步證實P53與HDR精準編輯的關系。如果可以的話嗡载,最好把細胞周期結果補一補窑多,進一步驗證“P53-細胞周期阻滯-HDR精準修復效率”這個機制。
綜上所述洼滚,P53激活導致的細胞周期阻滯會降低HDR精準編輯效率埂息,而抑制P53可以增加精準編輯的效率。
3. 未解決問題
即使短暫的P53抑制都有可能會導致染色質重排或者基因損傷修復失敗遥巴,從而積累DNA突變千康,對后續(xù)應用造成影響,因此需要進一步的工作去驗證短時P53抑制對細胞的影響铲掐。在這里不得不佩服大課題組的敏銳嗅覺拾弃,這篇文章發(fā)表于2018年6月份,就在2019年就已有關于瞬時抑制P53對細胞基因組或功能影響的研究摆霉,且該文發(fā)表在干細胞領域top期刊cell stem cell上豪椿,下次我們將來解讀,別人是如何解決這個問題的携栋。
結語
別看這篇文章只是brief communication搭盾,文章篇幅雖短,但是實驗設計十分精巧刻两。尤其是如何擺脫P53和凋亡之間的關系增蹭,轉而研究細胞周期這部分,做了很好的銜接磅摹。早在2019年我也讀過這篇文章滋迈,從前讀文章只會看結果,讓自己強行接受作者的觀點户誓。而這次有了前面幾篇文章的鋪墊饼灿,我開始會橫向比較這些工作的不同,以及他們?nèi)绾未_定自己的方向帝美。白天太忙有時候無法思考碍彭,到了晚上躺在床上拿出手機細細的看,寫寫筆記,越看越對頭庇忌。最近已經(jīng)愛上了這樣的文獻閱讀方式舞箍,假以時日,我們期盼能把P53和CRISRP-Cas9之間的經(jīng)典文章都過一遍皆疹,組成自己的小宇宙疏橄。同時在文末不斷的強調(diào)這是學習筆記,希望大家多多反饋交流略就。也在這里像廣大小伙伴發(fā)出邀請捎迫,如果您也想一起看文章,請在評論摳1表牢,但最終還是要圍繞自己的可以讀文窄绒,還是有個輕重緩急。
我們最終的目的還是:一起學習崔兴!
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質粒系列之什么是質粒 - 再談了最傳統(tǒng)的限制性克隆:
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不想再用慢病毒了螺戳,我還有什么別的選擇嗎?piggyBac transposon - 此外我們本還有一個CRISPR screening的專題折汞,只有開頭倔幼,未得完善:精準大海撈針--5. CRISPR screening專題
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